10 кубиков в шприце это сколько мл: Сколько и чего помещается в шприце. Ответы на самые важные вопросы о шприцах.

Содержание

Цефтриаксон — 10 ответов на Babyblog

К@трин☚

Разводить надо чем-то одним. Почитайте в инструкции на сколько мл ледокаина (лучше его, это обезбаливающее) разводить 1г лекарства, разведите и наберите в шприц половину объема разведенного.

Яна

с 2% лидокаином разводят обычно, потому что его чаще можно найти в аптеке.. чтобы получить необходимый раствор, нужно:1г цефтриаксона + 1,8 мл воды для инъекций + 1,8 мл лидокаина 2%-го = нужный раствор.. и в шприц набираете столько мл, сколько вам назначили=)

Runchik

уколы этого препарата болезненны, для этого при внутримышечном введении разводят лидокаином.

Ирина Гузина

Для внутримышечной инъекции 500 мг (0,5 г) препарата следует растворить в 2 мл (1 ампула) 1%-ного раствора Лидокаина (или на 1000 мг (1 г) препарата — 3,5 мл раствора Лидокаина (обычно используют 4 мл, так как это составляет 2 ампулы Лидокаина по 2 мл)). При этом не рекомендуется в одну ягодичную мышцу вводить более 1 г раствора. Дозировка 250 мг (0,25 г) разводиться также как и 500 мг (ампул по 250 мг не существовало на момент написания данной инструкции). То есть 500 мг (0,5 г) препарата следует растворить в 2 мл (1 ампула) 1%-ного раствора Лидокаина, а затем набрать в два разных шприца по половине готового раствора. Таким образом обобщим: 1. 250 мг (0,25 г) готового раствора получаем так: 500 мг (0,5 г) препарата следует растворить в 2 мл (1 ампула) 1%-ного раствора Лидокаина и набрать полученный раствор в два разных шприца (по половине готового раствора). 2. 500 мг (0,5 г) готового раствора получаем так: 500 мг (0,5 г) препарата следует растворить в 2 мл (1 ампула) 1%-ного раствора Лидокаина и набрать полученный раствор в 1 шприц. 3. 1000 мг (1 г) готового раствора получаем так: 1000 мг (1 г) препарата следует растворить в 4 мл (2 ампулы) 1%-ного раствора Лидокаина и набрать полученный раствор в 1 шприц.

Ирина Гузина

Но можно использовать и 2% р-р лидокаина. Только его надо развести до 1% р-ра

Читать все 10 комментариев

Кафедра Анестезиологии и реаниматологии | ЮУГМУ, Челябинск

ВАЖНЫЕ «МЕЛОЧИ» В РАБОТЕ АНЕСТЕЗИОЛОГА-РЕАНИМАТОЛОГА.

1. «Правило десятки»

Умножив, процентное содержание препарата на десять, получим количество препарата в миллиграммах в одном миллилитре раствора. Например, имеем 1 мл однопроцентного раствора (1%) , в соответствии в «правилом десятки»

процент умножаем на 10 получаем 10 миллиграммов, если 0,1% раствор (к примеру, атропин) – 0,1х10 получаем 1 миллиграмм.

Соответственно и наоборот, зная количество миллиграмм в 1 миллилитре, легко сказать процентное содержание препарата. Так 50 мг калипсола содержится в 1 мл раствора. И если 50 разделить на 10 получаем, что калипсол это 5% раствор.

Пересчет очень прост и особенно удобен для расчета в больших объемах.

2.» Правило креста».

Получение из двух растворов третьего с заданной процентной концентрацией.

Правило несколько сложно для объяснения, но очень удобно в практической работе. Например, необходимо получить 20% раствор глюкозы, имея 400 мл 5% раствора глюкозы во флаконе и ампулы с 40% глюкозой. Опытная медсестра скажет надо добавить несколько ампул 40% раствора глюкозы. Но вот сколько – у каждого своя теория расчета.

Первая, самая логичная, которой и пользуются многие – рассчитать количество сухой глюкозы в 400 мл : если требуется 20% раствор, значит по «правилу десятки» в 1 мл 20% раствора будет 200 мг или 0,2 грамма (20 умножить на 10). Соответственно в 400 мл 80 грамм глюкозы (0,2 грамма умножить на 400).

На этой исходной цифре и строится вся следующая схема:

— в 400 мл 5% раствора глюкозы содержится 20 грамм (в 1 мл 5х10=50мг или 0,05 грамма, а в 400мл 0,05х400=20 грамм),

— то есть для получения 80 грамм необходимо добавит еще 60 грамм глюкозы из 40% раствора. Из расчета, что в 1 мл 40% раствора 0,4 грамма глюкозы (40х10=400 мг или 0,4 грамма) и для получения 60 грамм необходимо 150 мл 40% раствора глюкозы.

Но возникает практическое несоответствие – как во флакон емкостью 500 мл налить 550 мл (400мл 5% раствора и 150 мл

40% раствора, — и даже если это получится и в указанных 550 мл будет 80 грамм глюкозы, но процент уже изменится и будет не 20% раствор, а 14,5% (кому интересно можете пересчитать).

То есть опять вопрос, сколько отлить 5% раствора и сколько добавить 40% раствора. Поэтому данный метод расчета на наш взгляд более сложен, и мы предпочитаем правило расчета методом «креста».

Если внимательно посмотреть это несколько измененная, но всем известная со школы задача «на части», но представленная более образно, или как сейчас модно говорить «более графически».

1 этап:

-В первую строку, вписываем процент раствора с малой концентрацией, например 5% раствор глюкозы — цифру 5

-Во вторую строку, вписываем концентрация, которую хотим получить, например 20%, значит цифру 20

-В третью строку раствор с большой концентрацией, например 40% р -р глюкозы – цифру 40

2-й этап

Из большего числа, по диагонали, отнимаем меньшее.

— 20 минус 5 получаем — 15,

— 40 минус 20 получаем – 20.

15 и 20 это и есть искомое количество частей 5% и 40% растворов.

Примечание: На данном моменте у многих наступает недопонимание, что за искомые части.

Но все банально и просто. Мы ведь будем смешивать два раствора, в нашем примере это 5% и 40% раствор глюкозы и вот в сумме они дают 35 частей (20+15=35)

3-й этап – основной.

Необходимо определить чему равна одна часть, из 35 имеющихся.

Допустим нужно получить 400 мл исходного, то есть 20% раствора глюкоза.

— Значит 1 часть будет равна 11,4 мл ( 400мл разделить на 35частей).

— 20 частей 5% раствора глюкозы будут составлять 228,5 (грубо 230 мл), то есть 20 умножить на 11,4 мл.

— 15 частей 40% раствора глюкозы составят 171 мл (грубо 170 мл), аналогично 15 умножить на 11,4 мл.

4-й этап – приготовление раствора.

1. Из флакона содержащего 400мл 5% раствора глюкозы, соблюдая правила

асептики, убрать(удалить) 170 мл, то есть оставить 230 мл.

2. Добавить, соблюдая правила асептики, в данный флакон 170 мл 40% раствора глюкозы.

Получим требуемый -20% раствор глюкозы. Аналогично можно расcчитать любую необходимую концентрацию и для любого объема.

Можно конечно сказать, что мы должны пользоваться только готовыми растворами. Это правильно, но в условиях сохраняющегося финансового дефицита, приходится иногда готовить растворы и самим.

3. Метод разведения.

Довольно часто требуется ввести небольшое количество препарата, например 2 единицы инсулина или 1 тыс . ЕД гепарина, но исходная форма очень концентрирована. Например, инсулин 40 или 100 единиц в 1 мл и необходимо использование специальных шприцев. Сохраняющаяся недостаточная обеспеченность точно градуированными мелкими шприцами, требует решения на уровне «маленьких хитростей».

В данном случае очень просто, на основе «метода разведения» ввести хоть одну, хоть три – четыре единицы инсулина, даже при отсутствии специального инсулинового шприца.

Итак, допустим, имеем актрапид (инсулин) -40, то есть в 1 мл -40 единиц.

В шприц, емкостью 5 мл, набираем 0,5 мл актрапида (20 единиц).

Разводим физиологическим раствором до 5 мл и получается, что в 1 мл содержится уже 4 единицы (20:5=4).

И если, в «растворитель» необходимо добавить 2 единицы – вводим 0,5 мл, приготовленного раствора.

Аналогично можно приготовить и раствор гепарина для «заглушки» в подключичный катетер, и во многих других случаях.

4. «Петля безопасности».

При проведении инфузионной терапии целесообразно закрепление системы для инфузий с создание м так называемой «петли безопасности».

Во-первых, это страхует от возможного отсоединения системы при резком ее натяжении.

Во-вторых, ограничивает подвижность в месте пункции.

Создание «петли безопасности» при инфузии через подключичную вену, на уровне подмышечной впадины, дает страховку от подсоса воздуха (воздушной эмболии) при отрицательном ЦВД.

5. Разное.

— Пункция вены рекомендуется начинать, по возможности с наиболее дистально расположенной, например: на кисти, затем на предплечье и только потом кубитальная вена в локтевом сгибе.

— У больных, с явлениями возбуждения, целесообразна пункция вены на уровне средней трети предплечья, тогда нет опасности прокола вены при сгибании руки в локтевом суставе или в лучезапястном суставе.

— все закрепленные на коже предметы (трубки) фиксируются в двух местах, что ограничивает их подвижность в месте введения.

— Лейкопластырь держит не шириной, а длиной. Поэтому более целесообразно фиксировать инфузионные системы, различные датчики, кабели и трубки узкими, но относительно длинными полосками пластыря (т.е. 1 -1,5 см шириной и длиной не менее 7-10 см).

Инсулиновый шприц: что это и сколько кубиков?

Инсулиновый шприц

Инсулиновые шприцы служат для повсеместного использования людьми, борющимися с сахарным диабетом. На рынке доступны шприцы в различных вариантах объема (0,3; 0,5 и 1 мл).

Инсулиновый шприц должен быть оснащен солидной интегральной иглой, без риска ее отсоединения. Специально профилированные и острые иглы нужны для снижения до минимума боли во время инъекции инсулина. Доступные на рынке шприцы отличаются стерильностью и точным выполнением, что позволяет точно отмерить принимаемую дозу инсулина.

Подробнее об инсулиновых шприцах и их использовании при сахарном диабете читайте ниже в собранных мною статьях по этой теме.

Инсулиновые шприцы различных видов

Больным сахарным диабетом необходимы каждодневные инъекции инсулина. Если использовать для уколов обычные шприцы, то будут синяки и шишки. Инсулиновые шприцы сделают процедуру менее болезненной и упрощают ее.

Цена на инсулиновый шприц невысокая, а сделать укол им сможет больной сам, без посторонней помощи. Какие шприцы подходят для инъекции инсулина, виды и новинки в линейки моделей на фото и видео в этой статье.

Шприц — шприцу рознь

Использовать для инсулиновой инъекции специальный шприц начали врачи всего мира несколько десятков лет назад. Разработаны несколько вариантов моделей шприцев для диабетиков, использовать которые просто самостоятельно, например, ручка или помпа. Но устаревшие модели не потеряли своей актуальности.

К главным плюсам инсулиновой модели относятся простота конструкции, доступность. Инсулиновый шприц должен быть таким, чтобы больной мог в любое время безболезненно сделать себе укол, с минимальными осложнениями. Для этого необходимо правильно подобрать модель.

Что предлагает фармакология

В аптечных сетях представлены шприцы разных модификаций. По конструкции они бывают двух видов:

Одноразовые стерильные, у которого иглы сменные.
Шприцы со встроенной (интегрированной) иголкой. У модели отсутствует «мертвая зона», поэтому потери лекарства нет.

Какие виды лучше, ответить сложно. Современные шприцы-ручки или помпы можно носить с собой на работу или учебу. Препарат в них заправляется заранее, и остается стерильным до использования. Они удобные и имеют небольшой размер.

Дорогостоящие модели снабжены электронными механизмами, которые напомнят когда необходимо сделать укол, покажут сколько лекарства введено и время последней инъекции.

Выбираем правильный шприц

Правильный инсулиновый шприц имеет прозрачные стенки, чтобы больной мог видеть сколько лекарства набрано и введено. Поршень прорезинен и вводится препарат плавно и медленно.

При выборе модели для инъекций, важно разбираться в делениях шкалы. Количество делений на различных моделях может отличаться. Одно деление вмещает минимальный объем препарата, которое можно набрать в шприц.

Зачем необходима шкала делений

На инсулиновом шприце обязательно должна быть расписанные деления и шкала, если их нет, то приобретать такие модели не рекомендуем. Деления и шкала показывают больному какой объем концентрированного инсулина внутри. Стандартно это 1 мл препарата равен 100 единиц, но существуют дорогостоящие устройства на 40 мл/100 единиц.

Важно!У любой модели инсулинового шприца деления имеют небольшую погрешность, которая ровна ½ деления от общего объема.

Для примера, если вводить лекарство шприцом с делением 2 Ед., общая дозировка будет +- 0,5 единиц от лекарства. Для сведения читателей, 0,5 единиц инсулина способна снизить уровень сахара на 4,2 ммоль/л крови. У маленького ребенка этот показатель еще выше.

Эти сведения необходимо понимать любому больному сахарным диабетом. Небольшая погрешность, даже в 0,25 единиц способна привести гликемии. Чем меньше погрешность у модели, тем проще и безопаснее пользоваться шприцем. Это важно понимать, чтобы больной мог точно ввести дозу инсулина самостоятельно.

Чтобы максимально точно ввести препарат, придерживайтесь правил:

чем меньше шаг деления, тем точнее будет дозировка введенного препарата;
перед введением гормон лучше развести.

Стандартный инсулиновый шприц — это емкость не больше 10 единиц для введения препарата. Отмечается шаг деления следующими цифрами:

Чем дальше расположены цифры, тем крупнее они написаны. Такие виды шприцев удобны для больных с плохим зрением. В аптеках России в основном представлены модели с делением 2 или 1 Ед., реже 0,25 Ед.

Маркировка инсулина

Важно перед инъекцией правильно рассчитать дозировку инсулина. Существуют виды U-40, U-100.

На рынке в нашей стране и СНГ гормон выпускают во флаконах раствором по 40 единиц препарата на 1 мл. Маркируется он U-40. Стандартные одноразовые шприцы предназначен под этот объем. Рассчитать сколько мл в Ед. деления несложно, так как 1 Ед. на 40 делений ровняется 0,025 мл препарата. Наши читатели могут воспользоваться таблицей:

Объем инсулина, мл	Цифра на шкале делений
0,5	20
0,25	10
0,025	1

Теперь разберемся, как высчитать раствор концентрацией 40 ед./мл. Зная, сколько мл в одной шкале, можно высчитать какое количество единиц гормона получается в 1 мл. Для удобства читателей представляем результат, для маркировки U-40, в виде таблицы:

Ед. инсулина	раствор, мл
4	0,1
6	0,15
40	1

За границей встречается инсулин с маркировкой U-100. В растворе содержится 100 Ед. гормона на 1 мл. Для этого лекарства стандартные наши шприцы не подходят. Нужны специальные. Конструкция у них такая же, как U-40, но шкала делений рассчитана под U-100. Концентрация импортного инсулина выше нашего U-40 в 2,5 раза. Рассчитывать нужно, отталкиваясь от этой цифры.

Как применять инсулиновый шприц правильно

Рекомендуем использовать для гормонального укола шприцы, иглы которых не съёмные. Они не имеют мертвой зоны и медикамент будет введен в более точной дозировке. Единственный недостаток в том, что через 4-5 раз иглы будут тупиться. Шприцы, иглы которых съемные, более гигиеничные, но игла у них толще.

Практичнее чередовать: дома использовать одноразовый простой шприц, а на работе или в другом месте многоразовый с несъемной иглой.

Перед тем как набрать гормон в шприц, флакон необходимо протереть спиртом. Для кратковременного введения небольшой дозы, встряхивать медикамент не нужно. Большая дозировка выпускается в виде суспензии, поэтому перед набором, флакон встряхивают.

Поршень на шприце оттягивают до необходимого деления и игла вставляется во флакон. Внутрь пузырька вгоняется воздух, поршнем и медикамент под давлением внутри, набирается в устройство. Количество медикамента в шприце должно немного превышать вводимую дозу. Если внутрь попали пузырьки воздуха, то по нему следует легонько постучать пальцем.

Правильно использовать для набора препарата и введения разные иглы. Для набора медикамента можно использовать иглы от простого шприца. Ставить укол можно только с помощью инсулиновой иглы.

Существует ряд правил, которые подскажут больному как правильно смешать препарат:

в шприц сначала следует набрать инсулин короткого действия, затем продолжительного;
инсулин для короткого действия или НПХ следует использовать сразу после смешивания или хранить не более 3 часов.
нельзя смешивать инсулин средней продолжительности действия (НПХ) с суспензией продолжительного действия. Цинковый наполнитель преобразует длинный гормон в короткий. А это опасно для жизни!
Детемир и инсулин продолжительного действия Гларгин нельзя смешивать между собой и с другими видами гормонов.

Место, куда будет ставиться укол, протирается раствором антисептической жидкости или простым моющим составом. Не рекомендуем использовать спиртовой раствор, дело в том, что у больных диабетом кожа сохнет. Спирт высушит ее еще больше, появятся болезненные трещины.

Вводить инсулин необходимо под кожу, а не в мышечную ткань. Прокол иглы делается строго под углом 45-75 градусов, неглубоко. Вытаскивать иголку после введения препарата не стоит, подождите 10-15 секунд, чтобы гормон распределился под кожей. В противном случае, гормон частично выйдет наружу, в отверстие из-под иглы.

Ноу-хау в фармакологии — ручка-шприц

Ручка-шприц — это устройство, со встроенным картриджем внутри. Оно позволяет больному не носить везде с собой стандартный одноразовый шприц и флакон с гормоном. Виды ручки делятся на многоразовые и одноразовые. Одноразовое устройство имеет встроенный картридж на несколько доз, стандартно 20, после которых ручка выкидывается. Многоразовая предполагает смену картриджа.

У модели-ручки есть ряд преимуществ:

Дозировку можно автоматически выставить на 1 Ед.
Картридж имеет большой объем, поэтому больному можно отлучиться от дома на продолжительное время.
Точность дозировке выше, чем при помощи простого шприца.
Инъекция инсулина быстрая и безболезненная.
Современные модели дают возможность использовать гормоны различной формы выпуска.
Иглы у ручки тоньше, чем у самого дорого и качественного одноразового шприца.
для инъекции нет необходимости раздеваться.

Какой шприц подходит лично вам, зависит от материальных возможностей и предпочтений. Если больной диабетом ведет активный образ жизни, то ручка-шприц будет незаменима, пожилым людям подойдут недорогие одноразовые модели.

Сколько единиц в инсулиновом шприце

Традиционно для инъекций применяют инсулиновые шприцы, в настоящее время — пластиковые. Используемый в России стандартный шприц рассчитан на 1 мл инсулина с концентрацией 40 Ед. Маркировка на корпусе шприца нанесена в инсулиновых единицах, как на обычной линейке с цифрами 5, 10, 15, 20, 25, 30, 35, 40, а также с единичным шагом — делениями между указанными цифрами — соответствующим 1 Ед.

Внимание!Зарубежные инсулиновые шприцы могут быть объемом 0,3; 0,5 и 2 мл и с концентрацией 40; 100; реже — 80 Ед. Об исключительная важности учета этих показателей при введении инсулина смотрите в Правилах введения инсулина.

Для инъекций лучше использовать шприцы с приваренными (несъемными) иглами. При соблюдении правил гигиены пластиковые инсулиновые шприцы можно использовать повторно 2- 3 дня: достаточно закрыть иглу колпачком и хранить в таком виде без стерилизации.

Однако после 4-5 инъекций из-за притупления иглы введение инсулина становится болезненным. Поэтому при интенсивной инсулинотерапии одноразовые шприцы будут соответствовать названию «одноразовые». Перед инъекцией желательно протереть резиновую пробку флакона с инсулином ваткой, смоченной в 70%-ном спирте.

Флаконы с инсулином быстрого или короткого действия, а также с аналогами инсулина длительного действия (гларгин, детемир) не надо взбалтывать. Обычные инсулины замедленного действия — это суспензии, то есть во флаконе образуется осадок, и перед набором инсулина его нужно хорошо взболтать.

При инъекции одного вида инсулина надо оттянуть поршень шприца до отметки, указывающей на нужное количество единиц инсулина, затем проткнуть иглой резиновую пробку флакона с инсулином, надавить на поршень и впустить воздух во флакон.

Далее шприц с флаконом переворачивают вверх дном, держа их в одной руке на уровне глаз, оттягивают поршень вниз до отметки, чуть превышающей дозу инсулина. Прокалывать пробку флакона лучше в самом ее центре толстой иглой для обычных шприцев, а в дальнейшем вводить иглу инсулинового шприца в этот прокол. Если в набранный шприц попали пузырьки воздуха, следует пощелкать пальцами по шприцу и осторожно продвинуть поршень до отметки нужной дозы.

Правила смешивания разных инсулинов в шприце

Применение смеси разных видов инсулина при правильно подобранных дозах обеспечивает более ровное воздействие на уровень глюкозы в крови, чем раздельное введение тех же доз инсулинов. Однако при смешивании разных инсулинов возможны их физико-химические изменения, которые отражаются на их действии.

Правила смешивания разных инсулинов в шприце:

первым в шприц набирается инсулин короткого действия, вторым — средней продолжительности действия;
инсулин короткого действия и НПХ-инсулин средней продолжительности действия (изофан-инсулин) после смешивания может быть использован сразу же и храниться для последующего введения;
инсулин короткого действия нельзя смешивать с инсулином, содержащим цинк-суспензию, так как избыток цинка частично превращает «короткий» инсулин в инсулин средней продолжительности действия. Поэтому эти инсулины вводят раздельно в виде двух инъекций в участки кожи, отстоящие друг от друга не менее, чем на 1 см;
при смешивании быстрых (лиспро, аспарт) и длительно действующих инсулинов начало действия быстрого инсулина не замедляется. Замедление возможно, хотя и не всегда, при смешивании быстрого инсулина с НПХ-инсулином. Смесь быстрого инсулина с инсу-линами средней или длительной продолжительности действия вводят за 15 мин до еды;
НПХ-инсулин средней продолжительности действия нельзя смешивать с инсулином длительного действия, содержащим цинк-суспензию. Последний в результате химического взаимодействия может перейти в инсулин короткого действия с непредсказуемым эффектом после введения;
длительно действующие аналоги инсулина гларгин и детемир нельзя смешивать с другими инсулинами.

Место инъекции инсулина достаточно протереть теплой водой с мылом, а не спиртом, который сушит и утолщает кожу. Если использовался спирт, то он должен полностью испариться с кожи перед инъекцией.

Совет!Перед инъекцией надо собрать большим и указательным пальцем складку кожи с подкожно-жировой клетчаткой. Игла вкалывается вдоль этой складки под углом 45-75 градусов. Длина игл одноразовых инсулиновых шприцев 12-13 мм, поэтому при вкалывании иглы перпендикулярно к поверхности кожи инсулин будет введен внутримышечно, особенно у худощавых людей.

При введении больших доз инсулина во время вкалывания рекомендуется изменить направление хода иглы, а при вытаскивании немного провернуть шприц вокруг своей оси, чтобы предупредить обратное вытекание инсулина по каналу иглы. Во время инъекции не следует напрягать мышцы; иглу надо вводить быстро.

Введя инсулин, надо подождать 5-10 сек, чтобы весь инсулин всосался в кожу, а затем, все еще не разжимая пальцев, вынуть иглу. Это особенно важно при инъекции инсулинов продолжительного действия, а также смешанных (комбинированных) инсулинов.

Инсулиновые шприцы компании SHINA CORPORATION

Шприцы представлены в следующих объемах: 0,3 мл; 0,5 мл; 1 мл (U 40; U 100/80; U 100), с фиксированной иглой, размером 28G, 29G, 30G, 31G. Наряду с широким ассортиментом, шприцы инсулиновые отличает высокое качество. Это подтверждается сертификатами ISO9001:2000, ISO13485:2003, CE0120.

Шприцы инсулиновые одноразовые с фиксированной иглой обладают прозрачным цилиндром и четкой устойчивой к стиранию шкалой. Это позволит вам всегда визуально контролировать объем и качество вводимого препарата. Цена деления шкалы позволяет устанавливать дозу лекарственного вещества с требуемой точностью.

Наличие плавного резинового поршня поможет ввести лекарственное средство без рывков, мягко и незаметно. Компания SHINA CORPORATION полностью продумала дизайн инсулиновых шприцов, снабдив их площадкой для фиксации удлиненной формы, что поможет вам всегда надежно удерживать шприц в руках во время его использования.

Одной из самых важных деталей шприца является-игла. Благодаря оригинальной технологии лазерной заточки иглы, с уверенностью можно назвать Шприцы инсулиновые одноразовые атравматичными. Острие иглы имеет трехгранную заточку, это обеспечивает безболезненный прокол кожи.

Важно!Последующая ультразвуковая шлифовка иглы способствует значительному снижению брака и удалению микрочастиц металла с поверхности иглы. Иглы изготовлены из хирургической стали высокого качества, что позволяет при минимальной толщине стенки сохранять их прочность.

Для снижения минимального коэффициента трения иглы с тканями в момент ее введения и для улучшения скольжения, поверхность иглы обработана тонким слоем силикона, при этом сохраняется максимальная ее пропускная способность.

Цвет насадки иглы соответствует стандарту ISO:6009 DIN 13095 для легкой идентификации и выбора иглы.

Инсулиновые шприцы BD Micro-Fine Plus с интегрированной иглой

Инсулиновые шприцы BD Micro-Fine Plus предназначены для подкожного введения инсулина в необходимых концентрациях. Стерильный инсулиновый шприц одноразового применения.

Свойства и преимущества

Интегрированная несъемная игла позволяет полностью решить проблему «мертвого» пространства, тем самым обеспечивая введение всей дозы инсулина и снижая риск развития декомпенсации диабета.
Тройная лазерная заточка острия иглы и специальное запатентованное силиконовое покрытие позволяет минимизировать травму тканей, снижая риск развития липодистрофий.
При производстве поршня применяется безлатексная технология, обеспечивающая отсутствие аллергических реакций у пациента и медперсонала.
Точность дозирования инсулина обеспечена крупной и нестираемой шкалой, что очень удобно для пациентов с диабетическими поражениями глаз.
Инсулиновые шприцы BD Micro-Fine Plus отличаются по объему (0,3-0.5-1,0 мл), шагу дозирования (2 — 1 — 0,5 ЕД) и длине иглы (8 — 12,7 мм).
Инсулиновый шприц BD Micro-Fine Plus — шприц, созданый специально для маленьких пациентов. Шаг шкалы 0,5 ЕД позволяет без труда отмерить дозу инсулина, необходимую ребенку.
Инсулиновый шприц BD Micro-Fine Plus можно также рекомендовать беременным и пациентам, которым инсулин был назначен впервые: маленькая и тонкая игла 0,3 мм х 8 мм сделает инъекцию менее болезненной.

Материал изготовления

Цилиндр, поршень: полипропилен.
Уплотнитель поршня: Синтетический каучук (не содержит латекса)
Смазка: силиконовое масло.
Размер:BD Micro Fine Plus: 1 мл (U-40 и U-100) 0,5 мл (U-100) BD Micro Fine Plus Demi: 0,3 мл (U-100)

Характеристики

Качество: CE
Стерилизация: оксидом этилена.
Срок годности: 5 лет.
Количество в пластиковой упаковке — 10 шт.
Количество в упаковке/коробке — 100/500 шт.

Как пользоваться инсулиновым шприцем

Зарубежные инсулиновые шприцы могут быть объемом 0,3; 0,5 и 2 мл и с концентрацией 40; 100; реже — 80 Ед. Об исключительная важности учета этих показателей при введении инсулина смотрите в Правилах введения инсулина.

Перед инъекцией желательно протереть резиновую пробку флакона с инсулином ваткой, смоченной в 70%-ном спирте. Флаконы с инсулином быстрого или короткого действия, а также с аналогами инсулина длительного действия (гларгин, детемир) не надо взбалтывать. Обычные инсулины замедленного действия — это суспензии, то есть во флаконе образуется осадок, и перед набором инсулина его нужно хорошо взболтать.

Внимание!При инъекции одного вида инсулина надо оттянуть поршень шприца до отметки, указывающей на нужное количество единиц инсулина, затем проткнуть иглой резиновую пробку флакона с инсулином, надавить на поршень и впустить воздух во флакон.

Правила смешивания разных инсулинов в шприце

первым в шприц набирается инсулин короткого действия, вторым — средней продолжительности действия;
инсулин короткого действия и НПХ-инсулин средней продолжительности действия (изофан-инсулин) после смешивания может быть использован сразу же и храниться для последующего введения;
инсулин короткого действия нельзя смешивать с инсулином, содержащим цинк-суспензию, так как избыток цинка частично превращает “короткий” инсулин в инсулин средней продолжительности действия. Поэтому эти инсулины вводят раздельно в виде двух инъекций в участки кожи, отстоящие друг от друга не менее, чем на 1 см;
при смешивании быстрых (лиспро, аспарт) и длительно действующих инсулинов начало действия быстрого инсулина не замедляется. Замедление возможно, хотя и не всегда, при смешивании быстрого инсулина с НПХ-инсулином. Смесь быстрого инсулина с инсу-линами средней или длительной продолжительности действия вводят за 15 мин до еды;
НПХ-инсулин средней продолжительности действия нельзя смешивать с инсулином длительного действия, содержащим цинк-суспензию. Последний в результате химического взаимодействия может перейти в инсулин короткого действия с непредсказуемым эффектом после введения;
длительно действующие аналоги инсулина гларгин и детемир нельзя смешивать с другими инсулинами.

Перед инъекцией надо собрать большим и указательным пальцем складку кожи с подкожно-жировой клетчаткой. Игла вкалывается вдоль этой складки под углом 45-75 градусов. Длина игл одноразовых инсулиновых шприцев 12-13 мм, поэтому при вкалывании иглы перпендикулярно к поверхности кожи инсулин будет введен внутримышечно, особенно у худощавых людей.

При введении больших доз инсулина во время вкалывания рекомендуется изменить направление хода иглы, а при вытаскивании немного провернуть шприц вокруг своей оси, чтобы предупредить обратное вытекание инсулина по каналу иглы. Во время инъекции не следует напрягать мышцы; иглу надо вводить быстро.

Ведутся исследовательские работы по созданию новых способов введения инсулина с помощью ингаляторов, геля, глазных капель, пластырей и капсул. Безусловно, это будет огромным достижением науки и облегчением для пациентов, которые вынуждены каждый день использовать инъекционный способ введения инсулина.

До сих пор традиционным, основным и самым простым методом введения инсулина короткого и пролонгированного действия — являются подкожные инъекции, т.е применение одноразовых инсулиновых шприцов.

Инсулиновые шприцы

Одним из самых важных приспособлений для тех, кто страдает инсулинозависимым сахарным диабетом, является специальный шприц для введения лекарственного вещества. На сегодняшний день в аптеках Вашего города может быть представлен большой ассортимент шприцев для введения инсулина. Все шприцы являются стерильными с тонкими иглами, и пользоваться ими можно не более одного раза.

Совет!Однако некоторые все равно отдают предпочтение конкретным типам шприцев, поэтому и попробуем разобраться, почему так. Перед тем как вводить инсулин, необходимо пройти консультацию доктора, который скажет в какой дозе и как пользоваться шприцем, покажет место инъекции. Шприц для инсулина обладает конкретным объемом.

Цена деления — наиболее важная характеристика данного оборудования, ведь именно от этого зависит, какую дозу лекарства Вы введете. Ручка шприц для инсулина имеет специальный уплотнитель, что отражает, сколько вещества набрано, лучше отдавать предпочтение уплотнителю конической формы, он точнее отражает дозу.

Инсулиновый шприц деления которого бывают нескольких типов, и Вы выбирайте в зависимости от той дозы, что Вам надо ввести. К примеру, Вам нужно уколоть 1 ЕД инсулина, а шприц рассчитан на две. Нужно уметь посчитать одну цену деления и знать максимальный объем, чтоб рассчитать, сколько Вы вводите. Учитывайте, что все шприцы имеют ошибку измерения, и рассчитано, что она может доходить до +-0,5 % на одно деление.

Виды игл шприцев для введения инсулина

Инсулиновые шприцы виды, которых отличаются, различаются еще и по типу игл, которые в них используются. Все иглы — весьма острые, закрыты стерильными колпачками. Каждый из производителей говорит о том, что его игла намного острее и поэтому вводить лекарство лучше и безболезненно.

Однако как показывает практика, все они одинаковые, а производителям следует обратить внимание больше на дозировки и инсулиновые шприцы объем, которых будет небольшим, чтоб можно было ввести 1 ЕД и меньше. Инсулиновые иглы — стерильные и рассчитаны на одно использования в целях защиты от присоединения инфекционных осложнений.

Сколько можно сделать инъекций одной иглой?

На сегодняшний день довольно актуальный вопрос касается количества раз, что можно ввести инсулин шприцем для инсулина. Иглы проходят механическую заточку на заводе, а затем смазываются специальным раствором. Именно поэтому инъекция делается всего один раз. Шприц ручка инсулин продается с инструкцией, в которой сказано, что вводить и пользоваться можно всего один раз.

Однако не все диабетики соблюдают это правило, не понимая, что с каждым новым разом они травмируют ткани, ведь игла становится тупее и специальная смазка исчезает. Помните, что в дальнейшем многоразовое использование шприцев для инсулина приведет к микротравмам тканей, что не только представляет собой косметологический дефект, а и угрозу присоединения инфекции. Учитывайте все вышесказанное, однако при каких-то сложностях, лучше обратиться к доктору за консультацией.

Шприцы для инсулина, использование

Инсулиновый шприц, несмотря на распространённость шприц-ручек для инсулина, остаётся незаменимым для человека, страдающего сахарным диабетом. Тем более, в настоящее время, когда появились перебои с поставками импортных шприц-ручек и инсулина. Однако многие врачи и особенно их пациенты с сахарным диабетом, не знают, как правильно подобрать инсулиновый шприц для инъекций.

Сломалась шприц-ручка или закончились специальные иглы для нее, вы решили набрать инсулин из картриджа (пенфилла) инсулиновым шприцом. Не правильно подобранный для этого инсулиновый шприц может привести к ошибке в дозе инсулина. Если больной или врач вовремя не обратят внимание на эту ошибку, возможны случаи тяжелых гипогликемий из-за передозировки инсулина.

Другой ошибкой может стать использование шприца с градуировкой не соответствующей той, что указана на флаконе с инсулином меньшей концентрации, следствием этого можно ожидать “необъяснимого” повышения сахара в крови. Необъяснимого, если не знать следующего правила: для каждой концентрации инсулина должен использоваться соответствующий шприц.

Шприцы обычный и инсулиновый

Обычный шприц имеет градуировку в миллилитрах. Один миллилитр в шприце занимает объём в один кубический сантиметр. Отсюда, деление в один миллилитр на шприце иногда называют “один кубик”. Один миллилитр на шприце разбит на десять делений, таким образом, обычный шприц имеет самое маленькое деление в 0,1 миллилитра.

Важно!Инсулиновые шприцы имеют градуировку в инсулиновых единицах или просто в единицах. Первые инсулиновые препараты содержали одну единицу инсулина на миллилитр раствора, то есть, фактически инсулиновая единица равнялась одному кубику. Со временем концентрация изменилась.

Появились специализированные шприцы для инсулина. Они стали тоньше обычных шприцов, чтобы разместить на них градуировку в 1 деление равное 1 инсулиновой единице. Инсулиновые шприцы бывают объемом 0,3; 0,5; 1 мл и 2 мл. Наибольшее распространение получил инсулиновый шприц в объёмом в 1 миллилитр.

Инсулиновый шприц в 1 мл может иметь градуировку в 40 или 100 единиц (Units), соответственно, шприцы имеют маркировку U-40 и U-100. Другими словами, инсулин U-40 имеет концентрацию 40 ед/мл, а инсулин U-100 имеет концентрацию 100 ед/мл.

Произведём несложный расчёт, что бы узнать сколько единиц инсулина содержит 0,1 миллилитр (одно деление обычного шприца).

Для инсулинового шприца U-40:

количество миллилитров в одной единице — 1 мл : 40 ед = 0,025 мл
количество единиц в 0,1 миллилитре — 0,1 мл : 0,025 мл = 4 ед

Для инсулинового шприца U-100:

количество миллилитров в одной единице — 1 мл : 100 ед = 0,01 мл
количество единиц в 0,1 миллилитре — 0,1 мл : 0,01 мл = 10 ед

Инсулиновые шприцы U-40, U-100

Инсулиновые шприцы U-40, U-100 отличаются друг от друга, только разной градуировкой. Бывают шприцы универсальные, на одном шприце нанесены сразу две градуировки.
Одно маленькое деление на инсулиновом шприце соответствует одной инсулиновой единице.

Такое соответствие будет, если инсулин набранный в шприц нужной концентрации. Для этого необходимо использовать для шприцов U-40 ёмкости для инсулина с маркировкой U-40, для шприцов U-100 ёмкости для инсулина с маркировкой U-100.

Но иногда и очень часто бывает так, что в наличии есть шприц U-40, на ёмкости с инсулином (картридж шприц-ручки) указана маркировка U-100. Концентрация инсулина U-100 в разы превышает концентрацию в U-40. Если набрать инсулин U-100 в шприц U-40 в том же объёме, что и инсулин U-40, то получится передозировка инсулина.

Если 40 ед. U-40 в инсулиновом шприце U-40 содержатся в 1 мл раствора, то 40 ед. в инсулиновом шприце U-100 содержащимся в 0,4 мл раствора, иначе, объём раствора становится в 2,5 раза меньше. Отсюда, если вы вводите инсулин U-100 шприцом для U-40, то количество вводимого через инъекции инсулина должно быть в 2,5 раза меньше.

Примеры расчёта объёма раствора инсулина

Вначале отмечу, что полной взаимозаменяемости у инсулиновых шприцов нет.

Обычный шприц

У этого шприца минимальный объём два миллилитра (два кубика). Один миллилитр разбит на 10 делений по 0.1 миллилитру. Выше я написал, что 0,1 миллилитр содержит 4 ед. инсулина U-40 и 10 ед. инсулина U-100. Таким образом, дозировку в обычном шприце можно изменять с шагом:

для инсулина U-40 — 4,8,12,16,20 и т.д.
для инсулина U-100 — 10,20,30,40,50 и т.д.

Однако точность дозировки обычного шприца плохая, он не приспособлен для маленьких доз, в которых делаются инъекции инсулина. Поэтому вариант с обычным шприцом следует рассматривать, когда нет возможности достать инсулиновый шприц, а инъекцию инсулина делать надо.

Смотрите видео: Инсулиновый шприц: дозировки и цена деления

дозировка для детей по весу и возрасту

Карта дозировок Нурофен® для детей

Нурофен® для детей, суспензия для приема внутрь (апельсиновая, клубничная) 100 мг/ 5 мл

Возраст	Вес, кг	Доза, мл	Доза, мг	Раз в сутки	В сутки не более, мл	В сутки не более, мг
3-6 месяцев	5 — 7,6	2,5	50	3	7,5	150
6-12 месяцев	7,7 — 9	2,5	50	3-4	10	200
1-3 года	10 — 16	5	100	3	15	300
4-6 лет	17 — 20	7,5	150		22,5	450
7-9 лет	21 — 30	10	200		30	600
10-12 лет	31 — 40	15	300		45	900

Нурофен® для детей, суппозитории ректальные 60 мг

Возраст	Вес, кг	Доза	Раз в сутки	В сутки не более, мг
3-9 месяцев	6 — 8	1 суппозиторий (60 мг)	3	180
9 месяцев — 2 года	8 — 12	1 суппозиторий (60 мг)	4	240

Нурофен®, таблетки, покрытые оболочкой, 200 мг с 6 лет

Возраст	Вес, кг	Доза	Раз в сутки	В сутки не более, мг
6-12 лет	от 20	1 таблетка (200 мг)	3 -4	800 мг (4 таблетки)

¹ Е.И. Краснова, С.А. Лоскутова, Л.М. Панасенко. Грипп у детей – причины возникновения, течение и возможности лечения / // Лечащий врач. – 2013. — №8. – С. 48-54.

² Э.Э. Локшина, О.В. Зайцева, С.В. Зайцева и др. Применение новой формы ибупрофена у детей с лихорадкой при острых респираторных инфекциях// Вопросы современной педиатрии, 2013; 12 (4)

³ Инструкция по медицинскому применению препарата Нурофен® и Нурофен® для детей. Рег. уд.: ЛСР-006017/08, П N013012/01, П N014745/01. Фармакотерапевтическая группа: НПВП.

Сколько капель в 1 мл — сколько капель в чайной ложке и столовой

Сколько капель в 1 мл? Сколько вмещается капель в одной ложке чайной и столовой? Как отмерить капли в ложку без пипетки? Сколько капель в одной столовой ложке жидкости? Сколько капель в чайной ложке спиртовой настойки? Такие вопросы, как правило, возникают при приёме жидкостей, купленных без капельной пипетки, во время приёма домашней спиртовой настойки, при приготовлении дома кулинарных блюд, капельном приёме домашних жидких средств, измерения воды каплями.

Как измерить нужное количество капель, когда дома нет пипетки? Зная, какой объём одной капли в 1 мл, сколько капель в чайной и столовой ложке, жидкость можно отмерить обычными ложками – чайной и столовой ложкой.

Совет от Чудо-Повара. Помните! Объём стандартной чайной ложки равен 5 мл. Столовая ложка вмешает 15 мл, что в 3 раза больше объёма чайной ложки. 1 (одна) десертная ложка это 10 мл.

Сколько в 1 (одном) мл (миллилитре) капель

Сколько капель жидкости в чайной ложке

Сколько капель в столовой ложке

Какой объём капли в миллилитрах

Как отмерить капли чайной ложкой. 20, 25, 30, 40, 50 капель: это сколько в чайной ложке

Сколько капель в 1 мл: одной чайной и столовой ложке спиртовой настойки

Сколько капель в 1 мл, одной чайной и столовой ложке йода

Сколько капель в 1 мл, одной чайной и столовой ложке перекиси водорода

Сколько капель в 1 мл, одной чайной и столовой ложке масла

Сколько в 1 мл, одной чайной и столовой ложке капель сока

Как отмерить 10, 20, 30, 40 капель в ложку без пипетки

Сколько в 1 (одном) мл (миллилитре) капель

Для того, чтобы узнать, сколько миллилитров в различных небольших объёмах, необходимо знать, какой объем капли в миллилитрах. Объём одной капли в среднем составляет:

В фармацевтике объём воды и водных растворов рассчитывается такой мерой: 1 капля это 0,05 мл.
У спирта и спиртовых растворов – спиртовые настойки трав, средств на спиртовой основе: 1 капля это 0,02 мл.

Если высчитывать миллилитры по каплям, то в одном миллилитре жидкости содержится:

в 1 мл воды или водного раствора 20 капель;
в 1 мл спиртового раствора 40 капель.

Сколько капель жидкости в чайной ложке

В 1 чайной ложке вмещается 100 капель воды или водного раствора.
В одной чайной ложке 200 капель спиртового раствора.

Сколько капель в столовой ложке

В 1 столовой ложке 300 капель воды.
В одной столовой ложке 600 капель спиртового раствора.

Какой объём капли в миллилитрах

Сколько капель в миллилитрах жидкости — воды (или водного раствора) и спирта.

0,5 мл это сколько капель. 0,5 мл в каплях это 10 капель воды (водного раствора). 0,5 мл спиртовой настойки это 20 капель.
1 мл это сколько капель. 1 мл в каплях это 20 капель воды (водного раствора). 1 мл спиртового раствора это 40 капель.
2 мл это сколько капель. 2 мл в каплях это 40 капель водного раствора (воды). 2 мл спирта в каплях это 80 капель.
3 мл это сколько капель. 3 мл в каплях это 60 капель воды. 3 мл спиртового раствора это 120 капель.
4 мл это сколько капель. 4 мл в каплях это 80 капель водного раствора. 4 мл спиртовой настойки это 160 капель.
5 мл это сколько капель. 5 мл в каплях это 100 капель воды. 5 мл спирта это 200 капель.
10 мл это сколько капель. 10 мл в каплях это 200 капель водного раствора (воды). 10 мл спиртового раствора это 400 капель.
20 мл это сколько капель. 20 мл в каплях это 400 капель воды (водного раствора). 20 мл спирта равно 800 капель.
30 мл это сколько капель. 30 мл в каплях это 600 капель водного раствора (воды). 30 мл спиртовой настойки это 1200 капель.
50 мл это сколько капель. 50 мл в каплях это 1000 капель водного раствора (воды). 50 мл спирта это 2000 капель.
100 мл это сколько капель. 100 мл в каплях это 2000 капель воды (водного раствора). 100 мл спиртовой настойки это 4000 капель.

Как отмерить капли чайной ложкой. 20, 25, 30, 40, 50 капель: это сколько в чайной ложке

Как отмерить нужное количество капель чайной ложкой? Мерить капли чайной ложкой сложно, невозможно добиться точных измерений, особенно, когда требуется измерить небольшое количество капель. Расчёты в таблице даны примерные, в расчетах указана вода либо водные растворы:

20 капель воды (водного раствора) это сколько в чайной ложке. 20 капель это объём пятой части чайной ложки.
25 капель воды (водного раствора) это сколько в чайной ложке. 25 капель это объём четверти чайной ложки.
30 капель воды (водного раствора) это сколько в чайной ложке. 30 капель это объём трети чайной ложки.
40 капель воды (водного раствора) это сколько в чайной ложке. 40 капель это объём две пятых части чайной ложки.
50 капель воды (водного раствора) это сколько в чайной ложке. 50 капель это половина чайной ложки.

Сколько капель в 1 мл: одной чайной и столовой ложке спиртовой настойки

Купили спиртовую настойку, принесли домой, открыли упаковку, а пипетки нет. Как правильно принять настойку на спирту согласно инструкции, если нет дозатора, как отмерить её каплями? Сколько капель в 1 мл, одной ложке чайной и столовой спиртовой настойки?

Чтобы узнать 1 мл это сколько капель либо сколько капель в миллилитре, необходимо представлять себе, что такое капли. Капля – небольшой объём жидкости. Как известно, капли принято использовать в косметологии, фармакологии в качестве единицы измерения объёмов жидкостей: косметических средств и травяных спиртовых настоек.

Различные жидкости имеют разные вес и объём. Показатели веса и объёма жидкостей зависят от их густоты, вязкости и консистенции. Помимо густоты жидкости на количество капель влияет толщина самой капельницы. Как же высчитать, сколько нужно капать капель спиртового раствора, чтобы получить необходимый эффект от препарата. Сколько мл в одной капле, сколько в чайной ложке капель и столовой.

Предлагаем воспользоваться таблицей с правильными расчётами:

Настойка Эхинацеи:

1 капля настойки Эхинацеи это 0, 05 мл;
в одной чайной ложке Эхинацеи вмещается 5 мл;
в одной столовой ложке 15 мл Эхинацеи.

Амбробене:

1 капля Амбробене это 0, 09 мл;
в одной чайной ложке Амбробене 7 мл;
в одной столовой вмещается 20 мл Амбробене.

Настойка Пустырника:

1 капля настойки Пустырника это 0, 05 мл;
в одной чайной ложке Пустырника вмещается 5 мл;
в одной столовой ложке 15 мл Пустырника.

Корвалол:

капля Корвалола это 0, 07 мл;
в одной чайной ложке Корвалола 6 мл;
в одной столовой ложке вмещается 17 мл Корвалола.

Валерьянка:

капля Валерьянки это 0, 05 мл;
в одной чайной ложке Валерьянки вмещается 5 мл;
в одной столовой ложке 15 мл Валерьянки.

Настойка Элеутерококка:

капля настойки Элеутерококка это 0, 05 мл;
в одной чайной ложке Элеутерококка 5 мл;
в одной столовой ложке вмещается 15 мл Элеутерококка.

Сколько капель в 1 мл, одной чайной и столовой ложке йода

По густоте йод совпадает с консистенцией воды, но следует помнить, что капли бывают разные. Капля зависит от размера пипетки, капельного дозатора или обычной трубки откуда она капает. Но если мерить ложками:

в одной чайной ложке 100 капель йода или 5 мл;
в одной столовой ложке 300 капель йода или 15 мл;
в 1 мл йода или йодного раствора 20 капель.

Применение в домашних условиях йода порождает у пользователей популярной жидкости множество вопросов, отныне Вам не придётся размышлять: сколько капель в одном миллилитре, одной чайной и столовой ложке йода.

Сколько капель в 1 мл, одной чайной и столовой ложке перекиси водорода

Перекись водорода имеет широкую область применения в быту для уборки дома, промывания пораненных участков кожи. Перекись водорода в бутылочках применяют раствор для комнатных растений. Нередко в рецептах пропорции для использования перекиси водорода в быту не указаны.

Так сколько же капель в 1 мл, одной чайной и столовой ложке перекиси водорода?

в одной чайной ложке вмещается 100 капель перекиси или 5 мл;
в 1 мл перекиси 20 капель.

Сколько капель в 1 мл, одной чайной и столовой ложке масла

Эфирные масла, как правило, используют в ароматерапии и косметологии. Эфирные масла каплями добавляют для изготовления масок по уходу за кожей лица в домашних условиях. Вязкость и густота эфирного масла, в зависимости от вида масел различная.

Давайте узнаем. Сколько капель в 1 грамме масла? Сколько же грамм в 1 мл масла? Сколько в одной столовой и 1 чайной ложке содержится масла эфирного и базового?

Эфирные масла: миндальное, кокосовое, лавандовое, пачули, апельсиновое, нероли, касторовое, розовое и любое эфирное масло:

1 капля = 0, 06 мл;
10 капель = 0, 6 мл;
1 мл – 17 капель;
Одна чайная ложка – 83-84 капли или 5 мл;
Одна столовая ложка равна 3 чайным – 250 капель или 15 мл.

Базовые масла: подсолнечное, оливковое, виноградное, льняное, репейное, тыквенное:

1 капля = 0, 03 мл;
10 капель = 0, 3 мл;
1 мл – 33 капли;
Одна чайная ложка – 167-168 капель или 5 мл;
Одна столовая ложка равна 3 чайным – 468 капель или 14 мл.

Сколько в 1 мл, одной чайной и столовой ложке капель сока

Жидкие ингредиенты, такие как соки, особенно лимонный сок, часто встречаются в составе кулинарных рецептов домашних заготовок на зиму, маринадов без уксуса. Фруктовый сок тяжелее воды, следовательно, плотность его выше и, по сравнению с водой, численность капель сока в чайной ложке будет меньше.

1 капля сока = 0, 055 мл;
в одной чайной ложке 91 капля сока;
в одной столовой ложке 273 капли сока.

Как отмерить 10, 20, 30, 40 капель в ложку без пипетки

Имея дома специальный дозатор, на котором написано, сколько в капле миллилитров, просто отмерить 10, 20, 30, 40 капель в ложку, но если нет дозатора и нет пипетки, как точно отмерить капли?

Размышляете, как отмерить 30 капель без пипетки? Маленькие дозировки по каплям без пипетки и дозатора можно отмерить с помощью чайных ложек в домашних условиях либо при помощи подручных средств:

Первым делом проверьте дома наличие пипетки, мерной ложечки.
В домашней аптечке зачастую стоят бутылочки, накрытые мерными колпачками, мензурками, снабжённые мерными ложечками, предназначенные для измерения спиртовой настойки либо препарата в жидкой форме. Такая находка непременно выручит.
Подойдёт соломинка для коктейлей. Смастерить из трубочки пипетку – проще простого. Достаточно набрать в неё жидкий препарат, закрыть один кончик пальцем и прокапать содержимое в ложку чайную, столовую. Но нужно учитывать толщину самодельной пипетки.
Когда необходимо узнать, сколько капель в 1 мл, можно использовать шприц, объём которого составляет 1 мл.

Из выше написанного следует, что однозначный ответ на вопрос, сколько капель в 1 (одном) мл (миллилитре), получить невозможно, каждая отдельная жидкость имеет различное количество капель. Надеемся, что приведённые расчёты и таблицы помогут Вам, когда возникнет необходимость дозирования различных жидкостей и жидких средств без пипетки и дозатора с помощью ложек.

Знания, сколько капель в миллилитре, какой объём капли жидкости в мл, обязательно пригодятся пусть не сегодня, а в будущем, и тогда Вам не придётся гадать, как отмерить капли в ложку без пипетки.

Характеристики

ООО «Эскулап» — одноразовые инъекционные стерильные иглы

Характеристика:

Предназначены для проведения внутрикожных, подкожных, внутривенных и внутримышечных инъекций
Иглы изготовлены из тончайшей хирургической стали
Высокоточная заточка иглы обеспечивает безболезненную инъекцию
Разъем Луер обеспечивает надежное крепление
Все иглы подходят для винтового соединения Луер-Лок
Внутренняя упаковка 100 шт.
Транспортная упаковка 5000 шт.
Каждая инъекционная игла имеет индивидуальную блистерную упаковку
Маркировка по ГОСТ ISO 7864-2011
Срок годности 5 лет

Наименование, размер (дюймы)	Размер, мм	Цвет канюли
Игла инъекционная ООО «Эскулап» 18G х 1 1/2″	1,2 х 40 мм	Розовый
Игла инъекционная ООО «Эскулап» 21G х 1 1/2″	0,8 х 40 мм	Зеленый
Игла инъекционная ООО «Эскулап» 23G х 1”	0,6 х 25 мм	Голубой
Игла инъекционная ООО «Эскулап» 26G х 1/2″	0,45 х 12 мм	Коричневый

Фирма, страна-изготовитель ООО «Эскулап», Россия.

Шприцы ООО «Эскулап» трёхкомпонентные.

ООО «Эскулап» — одноразовые трехкомпонентные инъекционные стерильные шприцы 1, 2, 5, 10 мл (игла надета на шприц).

Характеристика:

Наличие уплотнительной манжеты с двумя кольцами, что обеспечивает более плавное, без рывков, движение поршня шприца
Стопорное кольцо предупреждает случайное извлечение поршня из цилиндра
Точная контрастная черная градуировка нанесена на колбу
Абсолютно прозрачный цилиндр улучшает контроль содержимого шприца
Цилиндр изготовлен из высококачественного полипропилена
Поршень изготовлен из высококачественного полипропилена
Каждый шприц имеет индивидуальную блистерную упаковку
Маркировка по ГОСТ ISO 7886-1-2011
Срок годности 5 лет

Наименование	Игла в комплекте	Упаковка шт.	Доп объем до	Объём/Вес
Шприц ООО «Эскулап» 1 мл (Туберкулиновый шприц)	0,45x12mm (26Gx1/2″)	1250	—	0,04 м3 / 5,90 кг
Шприц ООО «Эскулап» 2 мл	0,60х30mm (23Gх1 1/4″)	1000	2,5 мл	0,04 м3/ 5,90 кг
Шприц ООО «Эскулап» 5 мл	0,70х40mm (22Gх1 1/2″)/ 0,80х40mm (21Gх1 1/2″)	800	6 мл	0,04 м3/ 6,10 кг
Шприц ООО «Эскулап» 10мл	0,80х40mm (21Gх1 1/2″)	500	12 мл	0,04 м3/ 5,70 кг

Шприцы ООО «Эскулап» трёхкомпонентные.

ООО «Эскулап» — одноразовые трехкомпонентные инъекционные стерильные шприцы 20 мл (игла упакована рядом со шприцем).

Характеристика:

Наличие уплотнительной манжеты с двумя кольцами, что обеспечивает более плавное, без рывков, движение поршня шприца
Стопорное кольцо предупреждает случайное извлечение поршня из цилиндра
Точная контрастная черная градуировка нанесена на колбу
Абсолютно прозрачный цилиндр улучшает контроль содержимого шприца
Цилиндр изготовлен из высококачественного полипропилена
Поршень изготовлен из высококачественного полипропилена
Каждый шприц имеет индивидуальную блистерную упаковку
Маркировка по ГОСТ ISO 7886-1-2011
Срок годности 5 лет

Объем	Игла в комплекте	Упаковка шт.	Доп объем до	Объём/Вес
Шприц ООО «Эскулап» 20 мл	0,80х40mm (21Gх1 1/2″)	300	25 мл	0,04 м3 / 5,80 кг

Фирма, страна-изготовитель ООО «Эскулап», Россия.

Шприцы инсулиновые ООО «Эскулап» трехкомпонентные.

ООО «Эскулап» — одноразовые инсулиновые трехкомпонентные инъекционные стерильные шприцы 1мл.

Характеристика:

наличие уплотнительной манжеты с тремя кольцами, что обеспечивает более плавное, без рывков, движение поршня
стопорное кольцо предупреждает случайное извлечение поршня из цилиндра
точная контрастная черная градуировка абсолютно прозрачный цилиндр улучшает контроль содержимого шприца
цилиндр изготовлен из высококачественного полипропилена
поршень изготовлен из полиэтилена низкого давления
каждый шприц имеет индивидуальную блистерную упаковку
Маркировка по ГОСТ ISO 7886-1-2011
Срок годности 5 лет

Наименование	Игла в комплекте	Упаковка шт.	Доп объем до	Объём/Вес
ООО «Эскулап» 1 ml U100 Инсулин	0,4x12mm	1250	—	0,04 м3 / 5,90 кг

Фирма, страна-изготовитель ООО «Эскулап», Россия.

ООО «Эскулап» — одноразовые трехкомпонентные стерильные шприцы для промывания 50 мл (игла упакована рядом со шприцем)

Характеристика:

наличие уплотнительной манжеты с тремя кольцами, что обеспечивает более плавное, без рывков, движение поршня
стопорное кольцо предупреждает случайное извлечение поршня из цилиндра
точная контрастная черная градуировка абсолютно прозрачный цилиндр улучшает контроль содержимого шприца
цилиндр изготовлен из высококачественного полипропилена
поршень изготовлен из полиэтилена низкого давления
каждый шприц имеет индивидуальную блистерную упаковку
Маркировка по ГОСТ ISO 7886-1-2011
Срок годности 5 лет

Объем	Игла в комплекте	Упаковка шт.	Доп объем до	Объём/Вес
Шприц ООО «Эскулап» 50 мл	1,20х40mm (18Gх1 1/2″)	150	—	0,04 м3 / 6,0 кг

Фирма, страна-изготовитель ООО «Эскулап», Россия.

*Примечание: Комплектация шприцев осуществляется любой иглой или без иглы по желанию заказчика.

Сколько чернил заправлять в картриджи со встроенной печатающей головкой Canon и HP

Картриджи со встроенной печатающей головкой устанавливаются на самые дешёвые бытовые принтеры Canon и HP. Подобные аппараты, с точки зрения печати, представляют собой лишь протяжный механизм для бумаги, да двигатель каретки, на которую устанавливаются чернильницы, что и объясняет низкую стоимость самих устройств. Картриджей в таких принтерах, как правило, два и стоят они очень дорого (с точки зрения цены за 1 мл чернил) – внутри ведь патентованная технология печати.

То есть, копировать чернильницы со встроенной ПГ, во-первых, сложно (если вообще возможно), а во-вторых не слишком законно (это будет уже технологическое пиратство в чистом виде). Поэтому единственным доступным вариантом «альтернативной печати» для двухкартриджных моделей является перезаправка оригиналов в той или иной форме, чаще всего – просто шприцем.

Объём заправляемых чернил

На упаковках картриджей со встроенной ПГ редко пишут их реальный объём, ограничиваясь усреднённым ресурсом распечатываемых страниц. В связи с чем у владельцев принтеров регулярно возникают вопросы о том, сколько же нужно краски залить в опустевшую чернильницу.

Правильный ответ – заливать столько, чтобы чернила начали вытекать.

Объёмы чернильниц в двухкартриджных принтерах могут варьироваться примерно в диапазоне от 1 до 10 мл, зависит от модели. Стоит также понимать, что чёрных чернил всегда больше, потому что под них выделен целый картридж, а голубые, пурпурные и жёлтые соседствуют вместе в одном.

Например, в популярном HP DeskJet 2130 используются 123 картриджи. В стандартном чёрном 3,5 мл чернил, а в версии XL – 8 мл. Цветные картриджи имеют аналогичный суммарный объём, но в пересчёте на каждый цвет, это получается примерно 1,2 мл для обычного и 2,7 мл – для большого. Эти данные взяты из открытых источников в сети, но быть уверенным в их точности нельзя. А для большинства других картриджей информации об объёме нет вовсе. Так что в большинстве случаев заправка осуществляется «на глазок».

Для заправки берётся шприц с инсулиновой иглой (или с обычной, но под него придётся расширять отверстия), в него набираются совместимые чернила нужного цвета. Иглой шприц аккуратно вставляется в воздушное отверстие, но не слишком глубоко, примерно на 1,5-2 см, чтобы не повредить наполнитель. Далее чернила медленно и аккуратно вливаются в картридж, до тех пор пока не пойдут наружу (вокруг воздушного отверстия соберётся маленькая капелька). После этого остаётся извлечь иглу, промокнуть картридж салфеткой и заклеить отверстие.

Выводы

Таким образом, очевидно, что для перезаправки оригинальных картриджей со встроенной ПГ знать точный объём чернил не обязательно. Достаточно соблюдать осторожность, чтобы ничего не повредить. Остатки чернил из шприца всегда можно слить обратно в бутылочку. Ну, и стоит помнить, что рано или поздно печатающая голова в картридже выгорит (это может случится достаточно быстро), так что вечно его перезаправлять не получится.

Преобразование 1 + куб.см в мл — Преобразование единиц измерения

›› Перевести кубические сантиметры в миллилитры

Пожалуйста, включите Javascript для использования конвертер величин.
Обратите внимание, что вы можете отключить большинство объявлений здесь:
https://www.convertunits.com/contact/remove-some-ads.php

›› Дополнительная информация в конвертере величин

Сколько куб. См в 1 мл? Ответ: 1.
Мы предполагаем, что вы переводите между кубических сантиметров и миллилитров .
Вы можете просмотреть более подробную информацию о каждой единице измерения:
куб. См или мл
Производная единица СИ для объема — кубический метр.
1 кубический метр равен 1000000 куб. См, или 1000000 мл.
Обратите внимание, что могут возникать ошибки округления, поэтому всегда проверяйте результаты.
Используйте эту страницу, чтобы узнать, как переводить кубические сантиметры в миллилитры.
Введите свои числа в форму для преобразования единиц!

›› Таблица быстрой конвертации cc в ml

1 мл в мл = 1 мл

5 мл в мл = 5 мл

10 мл в мл = 10 мл

20 мл в мл = 20 мл

30 мл в мл = 30 мл

40 мл в мл = 40 мл

50 мл в мл = 50 мл

75 мл в мл = 75 мл

100 мл в мл = 100 мл

›› Хотите другие единицы?

Вы можете произвести обратное преобразование единиц измерения из мл в куб.см или введите любые две единицы ниже:

›› Преобразование общего объема

куб. См в галлон
куб. См в фемтолитр
куб. См в килолитр
куб.

›› Определение: кубический сантиметр

Кубический сантиметр (см3) равен объему куба с длиной стороны 1 сантиметр.Это была основная единица объема системы единиц CGS, и это законная единица СИ. Он равен миллилитру (мл).

Разговорные сокращения cc и ccm не являются SI, но являются общими в некоторых контекстах. Это словесное сокращение от «кубический сантиметр». Например, «куб.см» обычно используется для обозначения рабочего объема двигателей автомобилей и мотоциклов «у Mini Cooper был двигатель объемом 1275 куб. См». В медицине также распространено «сс», например «потеря крови на 100 см3».

›› Определение: Миллилитр

Миллилитр (мл или мл, также пишется миллилитр) — это метрическая единица объема, равная одной тысячной литра.Это внесистемная единица, принятая для использования в Международной системе единиц (СИ). Это в точности эквивалентно 1 кубическому сантиметру (см3 или, нестандартно, куб. См).

›› Метрические преобразования и др.

ConvertUnits.com предоставляет онлайн калькулятор преобразования для всех типов единиц измерения. Вы также можете найти метрические таблицы преобразования для единиц СИ. в виде английских единиц, валюты и других данных. Введите единицу символы, сокращения или полные названия единиц длины, площадь, масса, давление и другие типы.Примеры включают мм, дюйм, 100 кг, жидкая унция США, 6 футов 3 дюйма, 10 стоун 4, кубический см, метры в квадрате, граммы, моль, футы в секунду и многое другое!

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.

Настройка вашего браузера для приема файлов cookie

Существует множество причин, по которым cookie не может быть установлен правильно. Ниже приведены наиболее частые причины:

В вашем браузере отключены файлы cookie.Вам необходимо сбросить настройки своего браузера, чтобы он принимал файлы cookie, или чтобы спросить, хотите ли вы принимать файлы cookie.
Ваш браузер спрашивает вас, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались. Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, нажмите кнопку «Назад» и примите файлы cookie.
Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Если вы подозреваете это, попробуйте другой браузер.
Дата на вашем компьютере в прошлом. Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г., браузер автоматически забудет файл cookie.Чтобы исправить это, установите правильное время и дату на своем компьютере.
Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie. Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу. Чтобы предоставить доступ без файлов cookie потребует, чтобы сайт создавал новый сеанс для каждой посещаемой страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.

Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в файлах cookie может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта. Например, сайт не может определить ваше имя электронной почты, пока вы не введете его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступа к остальной части вашего компьютера, и только сайт, который создал файл cookie, может его прочитать.

Концентрация каталазы и перекиси водорода

Урок практический или демонстрационный

Перекись водорода ( H ₂ O ₂ ) является побочным продуктом дыхания и производится во всех живых клетках. Перекись водорода вредна и должна быть удалена, как только она вырабатывается в клетке. Клетки вырабатывают фермент каталазу для удаления перекиси водорода.

Это исследование рассматривает скорость производства кислорода каталазой в пюре картофель при изменении концентрации перекиси водорода.Кислород, произведенный за 30 секунд, собирается над водой. Затем рассчитывается скорость реакции .

Организация урока

Вы можете провести это исследование в качестве демонстрации при двух разных концентрациях или с группами студентов, каждая из которых работает с разной концентрацией перекиси водорода. Затем у отдельных студентов может быть время для сбора повторных данных. Группы из трех человек могут работать, чтобы собрать результаты для 5 различных концентраций и чередовать роли манипулятора устройства, считывателя результатов и писца.Сопоставление и сравнение результатов занятий позволяет учащимся искать аномальные и противоречивые данные.

Аппаратура и химия

Для каждой группы студентов:

Пневматический поддон / пластиковая чаша / доступ к подходящей раковине с водой

Колба коническая, 100 см ³, 2

Шприц (2 см ³) для второго отверстия резиновой пробки, 1

Измерительный цилиндр, 100 см ³, 1

Измерительный цилиндр, 50 см ³, 1

Стойка зажима, втулка и зажим, 2

Секундомер / секундомер

Для класса — устанавливает техник / учитель:

Перекись водорода, диапазон концентраций, 10 об., 15 об., 20 об., 25 об. И 30 об., 2 см ³ на группу каждой концентрации ( Примечание 1 )

Картофельное пюре, свежее, в стакане со шприцем для измерения минимум 20 см ³, 20 см ³ на группу на каждую исследуемую концентрацию пероксида ( Примечание 2 )

Резиновая заглушка, с 2 отверстиями, на 100 см ³ конических колб — подающая трубка с одним отверстием (соединена с резиновой трубкой 50 см)

Здоровье и безопасность, Технические примечания

При работе с перекисью водорода надевайте защитные очки и накрывайте одежду.
Немедленно смывайте с кожи брызги картофельного пюре или перекиси.
Помните о повышении давления, если реакционные сосуды заблокируются.
Будьте осторожны, вставляя пробку в коническую колбу — она должна быть плотно прилегающей, поэтому осторожно вставляйте пробку и закручивайте ее.

1 Перекись водорода: (См. Карту опасности CLEAPSS) Растворы менее 18 об. Являются НИЗКОЙ ОПАСНОСТЬЮ. Растворы с концентрацией 18-28 об.% РАЗДРАЖАЮТ. Будьте осторожны при снятии крышки с баллона с реагентом, так как внутри может повыситься давление газа.Разбавьте непосредственно перед использованием и поместите в чистую коричневую бутылку, потому что разбавление также разбавляет ингибитор разложения. Храните в коричневых бутылках, потому что перекись водорода быстрее разлагается на свету. Отменить все неиспользованные решения. Не возвращайте раствор в бутылки с запасом, потому что загрязнители могут вызвать разложение, и бутылка со временем может взорваться.

2 Картофельное пюре может раздражать кожу некоторых людей. Делайте свежие для каждого урока, потому что активность каталазы заметно снижается за 2/3 часа.Возможно, вам придется добавить воды, чтобы сделать его менее вязким и более легким в использовании. Диски картофеля реагируют слишком медленно.

3 Если пузырьки от резиновой трубки слишком большие, вставьте стеклянную пипетку или стеклянную трубку в конец резиновой трубки.

Процедура

БЕЗОПАСНОСТЬ: Используйте защитные очки и одежду от перекиси водорода. Как можно быстрее смойте с кожи брызги перекиси и протертое картофельное пюре.

Препарат

a Сделайте достаточное количество разбавленной перекиси водорода непосредственно перед уроком.Разложены в бутылках коричневого цвета ( Примечание 1 ).

b Делайте пюре из свежего картофеля для каждого урока ( Примечание 2 ).

c Установите пробки с двумя отверстиями, как описано в списке устройств и на схеме.

Расследование

d С помощью большого шприца отмерьте 20 см ³ картофельного пюре в коническую колбу.

e Надежно установите пробку в колбу — поверните и осторожно надавите.

f Наполните корыто, чашу или раковину водой наполовину.

г Заполните мерный цилиндр 50 см ³ водой. Переверните его над желобом с водой так, чтобы открытый конец находился под поверхностью воды в емкости, а конец резиновой трубки находился в мерном цилиндре. Зажмите на месте.

h Отмерьте 2 см ³ перекиси водорода в шприц 2 см ³. Вставьте шприц в пробку колбы, но не толкайте поршень сразу.

i Убедитесь, что резиновая трубка надежно закреплена в измерительном цилиндре. Надавите на поршень шприца и немедленно включите секундомер.

j Через 30 секунд запишите объем кислорода в мерном цилиндре в подходящей таблице результатов. ( Примечание 3 .)

k Опорожните коническую колбу и промойте ее. Отмерьте еще 20 см. ³ протереть картофельное пюре. Снова соберите прибор, заполните мерный цилиндр и повторите от г до j с другой концентрацией перекиси водорода.Используйте мерный цилиндр ³ на 100 см для концентраций перекиси водорода более 20 об.

л Рассчитайте скорость производства кислорода в см ³ / с.

m Постройте график зависимости скорости производства кислорода от концентрации перекиси водорода.

Учебные заметки

Обратите внимание на единицы измерения концентрации перекиси водорода — это не единицы СИ. 10 объемов перекиси водорода будут производить 10 см ³ кислорода на каждый см ³, который разлагается.( Примечание 1 .)

В этой процедуре 2 см ³ 10 об. Перекиси водорода высвободят 20 см ³ кислорода, если реакция завершится. Каждый раз в колбу добавляют 2 см ³ жидкости. Таким образом, если прибор герметичен, следует поместить 22 см ³ воды в мерный цилиндр с 10 объемами перекиси водорода. Кислород растворим в воде, но медленно растворяется в воде при нормальной комнатной температуре.

Используйте эту информацию для проверки практической настройки.Значения ниже 22 см ³ показывают, что кислород улетучился, или перекись водорода не прореагировала полностью, или концентрация перекиси водорода не соответствует ожидаемой. Попросите учащихся объяснить, как могут возникнуть значения более 22 см ³.

Ошибка ± 0,05 см ³ при измерении 30 объемов перекиси водорода может привести к ошибке ± 1,5 см ³ при производстве кислорода.

Печень также содержит каталазу, но обращение с субпродуктами вызывает больше споров среди студентов и представляет больший гигиенический риск.Кроме того, реакция настолько интенсивна, что пузырьки смеси могут переносить кусочки печени в трубку для доставки.

Если сбор газа над водой затруднен и у вас есть доступ к газовому шприцу размером 100 см ³, вы можете вместо этого собирать газ в нем. Обязательно зажмите газовый шприц надежно, но осторожно.

Реакция экзотермическая. Студенты могут заметить жар, если возьмутся за коническую колбу. Как это повлияет на результаты?

Проверено здоровья и безопасности, сентябрь 2008 г.

Загрузки

Скачать студенческую ведомость Исследование ферментативно-контролируемой реакции: концентрация каталазы и перекиси водорода (67 КБ) с вопросами и ответами

Интернет-ссылки

http: // www.saps.org.uk/secondary/teaching-resources/293-student-sheet-24-microscale-investigations-with-catalase Микромасштабные исследования с каталазой, которые были перенесены на этот сайт в разделе «Исследование активности каталазы в различных тканях растений».

(веб-сайт доступен в октябре 2011 г.)

Контролируемое рандомизированное исследование простого способа достижения более удовлетворительной блокады и уменьшения гипотонии

Anesth Essays Res. 2016 май-август; 10 (2): 312–318.

Амр Али Исмаил Кира

Кафедра анестезии и интенсивной терапии медицинского факультета Университета Бенха, Бенха, Египет

Али Мохамед Али Эльнабтити

¹ Кафедра анестезии и интенсивной терапии медицинского факультета Университета Загазига, Загазиг, Египет

Кафедра анестезии и интенсивной терапии, Медицинский факультет, Университет Бенха, Бенха, Египет

¹ Кафедра анестезии и интенсивной терапии, Медицинский факультет, Университет Загазига, Загазиг, Египет

Автор для переписки: ДокторАмр Али Исмаил Кира, больница доктора Солимана Факиха, улица Палестин, P.O. Box 2537, Jeddah 21461, KSA. Электронная почта: moc.oohay@areekrma Авторские права: © Anesthesia: Essays and Researches

Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями Некоммерческой лицензии ShareAlike 3.0 Creative Commons Attribution, которая позволяет другим редактировать, настраивать и развивать работу некоммерчески, при условии, что автор указан и новые творения лицензируются на идентичных условиях.

Эта статья цитируется в других статьях в PMC.

Abstract

Предпосылки:

Были предприняты многочисленные попытки предотвратить гипотензию во время спинальной анестезии. Однако выбор препарата и способ введения все еще остается предметом дискуссий.

Цели:

Сравнить результат спинномозговой инъекции гипербарического бупивакаина и фентанила отдельно со стандартной инъекцией смешанного фентанила с гипербарическим бупивакаином.

Настройки и дизайн:

Рандомизированное контролируемое клиническое исследование.

Пациенты и методы:

Сто двадцать четыре роженицы, которым запланировано плановое кесарево сечение, были случайным образом разделены на две группы, по 62 роженицы в каждой: группа M получила спинальную анестезию с использованием 10 мг 0,5% бупивакаина, предварительно смешанного с 25 мкг фентанила в одном шприце. и Группа S получала 25 мкг фентанила в один шприц и 10 мг 0,5% бупивакаина без барботажа во втором шприце.

Результаты:

Пациенты с интраоперационной болью, которую можно было контролировать без необходимости перехода на общую анестезию, были значительно ниже в группе S (3.2%), чем в группе M (16,1%). Частота гипотензии была значительно ниже в группе S по сравнению с группой M ( P <0,05). Время до начала сенсорного блока было незначительно короче с незначительно более высоким средним уровнем максимального сенсорного блока в группе S по сравнению с группой M ( P > 0,05). Не было существенной разницы во времени до возникновения гипотензии, продолжительности гипотензии, средней дозе эфедрина, использованной для лечения гипотензии, и частоте появления зуда у пациентов между группами ( P > 0.05).

Заключение:

Раздельная интратекальная инъекция фентанила и гипербарического бупивакаина обеспечила значительное улучшение качества сенсорного блока и значительное снижение частоты гипотонии по сравнению с инъекцией смешанных препаратов.

Ключевые слова: Бупивакаин, кесарево сечение, фентанил, раздельная, спинальная анестезия

ВВЕДЕНИЕ

Региональная анестезия становится все более предпочтительной при кесаревом сечении (КС).Спинальная анестезия, независимо от применяемых лекарств, в настоящее время является самым безопасным и популярным методом лечения CS. [1,2]

Гипотония — самая распространенная проблема при спинномозговой анестезии. В основном это происходит из-за симпатической блокады, приводящей к расширению периферических сосудов и скоплению крови в расширенном сосудистом русле с последующим уменьшением венозного возврата и сердечного выброса. Эта проблема усугубляется у рожениц, у которой может развиться гипотензия в силу своих положительных причин, когда в положении лежа на спине беременная матка сдавливает аорту и нижнюю полую вену относительно тел поясничного позвонка, что приводит к уменьшению венозного возврата, что может снижение сердечного выброса и артериального давления у матери, что приводит к нарушению маточно-плацентарной перфузии.[3,4,5]

Были проведены многочисленные испытания по предотвращению или борьбе с гипотонией с использованием позиционных изменений во время или сразу после спинномозговой инъекции. [6,7] Гидравлическая терапия была еще одним терапевтическим вариантом, но все еще ведутся споры о назначении кристаллоиды или коллоиды; [8] предварительная загрузка или колоадирование. [9] Пробовали использовать вазопрессоры для индукции сужения сосудов, чтобы бороться с расширением сосудистого русла; однако выбор препарата и способ введения в виде болюса или инфузии все еще остается предметом дискуссий.[10,11]

Фентанил представляет собой жирорастворимый опиоид с быстрым началом действия в течение 5 минут после интратекальной инъекции. [12] При добавлении к бупивакаину он значительно снижает боль во время КС. Между тем, интратекальное введение фентанила 25 мкг роженице без родов не вызывает клинически значимых изменений гемодинамики матери [13].

Настоящее исследование было направлено на сравнение эффекта спинномозговой инъекции гипербарического бупивакаина и фентанила отдельно со стандартной инъекцией смешанного фентанила с гипербарическим бупивакаином.

ПАЦИЕНТЫ И МЕТОДЫ

Текущее проспективное двойное слепое рандомизированное контролируемое исследование было проведено в больнице доктора Солимана Факиха, Калифорния, с 5/2013 по 10/2014. После утверждения протокола исследования местным этическим комитетом и получения полностью информированного письменного согласия пациентов в исследование были включены 124 доношенных роженицы, запланированных на плановую КС с неосложненной беременностью. Критерии исключения: роженица с массой тела <50 кг или> 90 кг, ростом <150 или> 170 см, преэклампсией, любым серьезным системным заболеванием, противопоказанием к регионарной анестезии или аллергией на использованные лекарства.Все пациенты посещали театр натощак не менее 6 часов и без введения премедикаций или предоперационных внутривенных (IV) жидкостей.

Пациенты (первичные роды или многоплодные беременные) были случайным образом разделены на две группы (62 роженицы в каждой группе): группа M включала рожениц, получавших спинальную анестезию с использованием 10 мг 0,5% бупивакаина, предварительно смешанного с 25 мкг фентанила в одном шприце, и группа S включала рожениц. получали одни и те же лекарства последовательно без предварительного смешивания с использованием двух разных шприцев; первый содержал 25 мкг фентанила, а второй — 10 мг гипербарического бупивакаина 0.5% без барботажа. Все лекарства были приготовлены перед введением спинномозговой иглы. Время между первым и вторым шприцами было минимальным, чтобы предотвратить потерю CSF с частью дозы фентанила. Демографические данные, включая возраст, рост и вес, были определены до операции. Лекарства вводили через спинномозговую иглу Квинке 25-го размера, вставленную в промежуток L3-4. Спинальная анестезия проводилась в положении сидя, затем роженицу предлагали лечь сразу после инъекции бупивакаина.Конверты, содержащие две техники, были помещены в коробку. Один анестезиолог в нашей больнице провел спинальную анестезию во всех случаях, и он не из исследовательской группы и не участвует в постспинальном ведении и записях. Он наугад взял конверт и следовал технике, написанной внутри, не сообщая об этом роженице. Анестезиолог-исследователь вошел в комнату сразу после спинномозговой анестезии и не знал, какой метод был использован. Он записал результаты на бумаге с номером файла пациента.Совместная внутривенная инъекция жидкости вводилась в дозе 15 мл / кг теплого лактатного раствора Рингера, который начинался как быстрое капание во время и продолжался после наложения спинальной анестезии через внутривенную канюлю 18 калибра.

Мониторинг пациентов включал следующее:

Артериальное давление и частоту сердечных сокращений контролировали неинвазивно каждые 2 мин в течение 30 мин, затем каждые 5 мин и гипотензию (систолическое артериальное давление <100 мм рт. Ст.) Лечили эфедрином (дозы 5–10 мг) . Электрокардиограмма и сатурация кислорода контролировались непрерывно.
Сенсорный уровень проверяли кубиком льда каждую минуту, пока уровень не достигал Т6, чтобы определить начало сенсорного блока.Затем через 30 минут регистрировалась высота максимального сенсорного блока.
Интраоперационное качество хирургической анестезии оценивалось с помощью системы Ochsner Health System, которая измеряет удовлетворенность пациента по четырем степеням: Отлично — пациент чувствовал себя комфортно во время операции, жалоб нет; Хорошо — небольшой дискомфорт, но нет необходимости в дополнительных лекарствах; Удовлетворительно — дискомфорт, но контролируемый маской из закиси азота с фентанилом или без него; и плохо — невозможно контролировать даже с помощью дополнительных лекарств, и переход на общую анестезию был обязательным [14]
Моторная блокада нижних конечностей была протестирована и оценена в соответствии с модифицированной шкалой Бромажа [15], где 0: моторная блокада отсутствует. , 1: Невозможно поднять вытянутую ногу (может согнуть колено), 2: Невозможно согнуть колено (может двигать только ступня), 3: Невозможно согнуть лодыжку (невозможно двигать ступней или коленом).Моторный блок оценивался каждые 5 мин в течение 30 мин. Определено время начала моторной блокады, время, прошедшее от начала спинальной анестезии до изменения степени 0 по шкале Бромажа на степень I, и продолжительность моторной блокады, время, прошедшее с момента начала моторной блокады до полного восстановления мышечной силы
Неонатальный исход в виде оценки по шкале Апгар через 1 и 5 мин.
Зуд классифицировался и контролировался как: легкий — без лечения, умеренный — лечили хлорфенирамина малеатом внутривенно, 10 мг; при отсутствии ответа или в случае сильного зуда вводили налоксон в дозе, титрованной в соответствии с эффектом.Что касается побочных эффектов, связанных со спинальной анестезией; тошнота, рвота, угнетение дыхания или дрожь регистрировались и контролировались
Демографические данные, включая возраст, рост и вес, были определены до операции.

Статистический анализ

Мощность выборки была рассчитана согласно Kraemer и Theimann [16] с использованием предложенного числа, показавшего, что размер выборки для 60% мощности потребует N более 30 / группу, 80% мощности потребует N от 50 / группа.Таким образом, мощность> 80% для обеспечения эффекта, таким образом, текущий размер выборки исследования был выбран после проведения пилотного исследования и сбора данных из других исследований, чтобы составлять 62 пациента в группе для достижения точки значимости <0,05. . Полученные данные были представлены в виде среднего значения ± стандартное отклонение, диапазонов, медианы, чисел и соотношений в соответствии с требованиями. Результаты были проанализированы с использованием Wilcoxon; ранжированный тест для несвязанных данных (Z-тест) и критерий хи-квадрат (χ ² тест). Статистический анализ проводился с использованием программы SPSS (версия 15, 2006 г., SPSS Inc., Чикаго, Иллинойс) для статистического пакета Windows. P <0,05 считалось статистически значимым.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Из 139 последовательных рожениц, прошедших оценку на соответствие критериям отбора, 12 не соответствовали критериям включения и были исключены. Еще трое рожениц отказались от участия в исследовании. Наконец, 124 роженицы были рандомизированы в две группы по 62 в каждой группе. Все роженицы, включенные в исследование, находились под пристальным наблюдением. Все 62 роженицы в каждой группе были рассмотрены для анализа [].Среди 124 рожениц; 82 женщины были первородящими, а 42 женщины — многоплодными. Все были доношенными, средний гестационный возраст 37,8 ± 0,8; диапазон: 37–39 недель. Средний возраст включенных в исследование рожениц составил 28,2 ± 2,4 года; диапазон: 23–33 года, 104 из них имели степень I Американского общества анестезиологов (ASA) и 20 — степень II степени ASA. Данные включения рожениц показаны в, между обеими группами включенных рожениц не было существенной разницы. Все пациенты прошли гладкий интраоперационный курс без осложнений при средней продолжительности операции 45.6 ± 7,2; диапазон: 30–55 мин без существенной разницы между обеими исследуемыми группами.

Таблица 1

Данные включения рожениц

Гипотония была зарегистрирована у 50 пациентов (40,3%): 32 в группе M и 18 в группе S со значительно более низкой (χ ² = 6,56, P <0,05) частотой гипотония в группе S по сравнению с группой М. Ранняя гипотензия возникла у 11 пациентов (17,7%) в группе S, что значительно ниже, чем в группе M (28 пациентов 45.2%). Однако поздняя гипотензия была незначительно больше в группе S, 7 (11,3%) по сравнению с 4 (6,5%) в группе М. Между тем, среднее самое низкое систолическое артериальное давление было незначительно (Z = 0,643, P > 0,05) выше в группе. S по сравнению с Группой M []. Время возникновения гипотензии с момента спинальной инъекции было незначительно (Z = 1,444, P = 0,19) больше в группе S по сравнению с группой М. Продолжительность гипотензии была незначительно (Z = 0,441, P = 0,671) меньше в группе S по сравнению с Группой M [].Средняя доза эфедрина, используемая для лечения гипотензии, была незначительно (Z = 0,745, P = 0,462) ниже в группе S по сравнению с группой M [].

Частота гипотонии в обеих группах. * Означает статистически значимое

Время до начала гипотензии и сенсорного начала в обеих исследуемых группах

Таблица 2

У двух пациентов (3,2%) интраоперационная боль контролировалась без необходимости перехода на общую анестезию, которая была значительно ниже. Группа S ( P = 0.002), чем в группе M (10 пациентов, 16,1%) []. Ни одному пациенту в обеих группах не потребовался перевод на общую анестезию. Однако время до начала сенсорного блока было незначительно (Z = 1,157, P > 0,05) короче в группе S по сравнению с группой М. Средний уровень максимального сенсорного блока был незначительным (Z = 9,321, P > 0,05) выше в группе S по сравнению с группой М. Время до начала и восстановления моторного блока и оценки по шкале Бромажа незначительно различались в обеих группах [].

Пациентам со слабым блоком потребовались дополнительные анальгетики. * Средние статистически значимые

Таблица 3

Средние 1-минутные и 5-минутные баллы по шкале Апгар были незначительно (Z = 1,204 и 1,508, соответственно, P > 0,05) в обеих группах. У 30 пациентов (48,4%) в каждой группе появился зуд. Однако только 6 пациентов (9,7%) в группе S нуждались в лечении, что незначительно ниже, чем у 14 пациентов (22,6%) в группе M. Однако все пациенты хорошо ответили на внутривенное введение хлорфенирамина малеата, за исключением двух пациентов в группе M, которым потребовался налоксон. .Ни одному из пациентов группы S налоксон не потребовался. У пятнадцати пациентов появилась тошнота; У 8 в группе M и у 7 в группе S, и у 7 пациентов был приступ рвоты; 3 в группе M и 4 в группе S без существенной разницы между обеими группами. Пациенты, у которых развилась рвота, отреагировали на внутривенное введение метоклопрамида. У 20 пациентов возникла легкая дрожь; 11 в группе M и 9 в группе S без значимой (χ ² = 2,638, P > 0,05) разницы. Угнетения дыхания или каких-либо других осложнений, кроме упомянутых выше, не было зарегистрировано ни в одной из групп [].

Таблица 4

Побочные эффекты, связанные со спинальной анестезией

ОБСУЖДЕНИЕ

Настоящее исследование направлено на сравнение эффекта спинальной инъекции фентанила и гипербарического бупивакаина последовательно со стандартной инъекцией смешанного фентанила с гипербарическим бупивакаином при КС.

Мы обнаружили, что раздельная интратекальная инъекция фентанила и гипербарического бупивакаина обеспечивала значительное улучшение качества сенсорного блока и значительное снижение частоты гипотонии по сравнению с инъекцией смешанных препаратов.

Понимание механизмов интратекального распространения наркотиков может объяснить наши результаты. Когда пациентов переворачивают на спину сразу после инъекции в поясничную область, гипербарический раствор под действием силы тяжести будет распространяться вниз по склону, создаваемому искривлением поясничного отдела позвоночника. Однако простой раствор, будучи менее вязким, довольно легко смешивается с CSF и, таким образом, легко перемещается через сжатое субарахноидальное пространство и не будет иметь распространения, зависящего от силы тяжести. [17,18]

Что касается результата; частота гипотонии значительно ниже в группе S по сравнению с группой М.На мой взгляд, смесь гипобарического фентанила и гипербарического бупивакаина спадала, затем они поднимались вместе, когда пациент ложился, действуя синхронно на одном уровне. Однако гипербарический бупивакаин, который вводили отдельно без перемешивания, был плотнее, чем смесь бупивакаина с фентанилом, и потребовалось больше времени для достижения конечного уровня, который задерживал начало симпатического блока и давал время для компенсаторного механизма предотвращения гипотонии. . Среднее отсроченное начало гипотензии в группе S (7 мин) по сравнению с группой M (5.6 мин) может подтвердить эту теорию. Это отсроченное начало симпатического блока соответствует результатам Helmi et al . и Martin et al ., которые пришли к выводу, что изобарический бупивакаин вызывает более быстрое начало гипотензии по сравнению с гипербарическим бупивакаином. [19,20]

Поздняя гипотензия, возникающая более чем через 30 минут после спинальной анестезии, наблюдается в обеих группах с незначительным больше пациентов в группе S. Впервые он был описан Kyokong et al ., и механизм этой поздней гипотензии остается неустановленным.[21] На мой взгляд, у некоторых пациентов есть умеренно слабые компенсаторные механизмы в верхней половине тела, которая истощается более чем через 30 мин. У этих пациентов в группе M развивается ранняя гипотензия из-за более быстрого симпатического блока и поздней гипотензии в группе S.

Наиболее значимым результатом нашей работы является значительное улучшение качества сенсорного блока в группе S по сравнению с группой. М. Мы считаем, что отдельная инъекция фентанила позволяет ему воздействовать на более высокие уровни в спинном мозге, предотвращая висцеральную боль.Давно известно, что фентанил и суфентанил улучшают нейроаксиальную анестезию, уменьшают трансоперационную боль и умеренно продлевают сенсорный блок. [22,23]

Ответ на интратекальные препараты с разной баричностью, вводимые последовательно, впервые был изучен Цезуром и соавт. ., которые сравнили роженицу, получавшую 10 мг гипербарического бупивакаина с теми, кто получал 5 мг обычного и 5 мг гипербарического бупивакаина последовательно для спинальной анестезии. Они обнаружили, что у рожениц, которые получали 5 мг гипербарического бупивакаина последовательно и 5 мг гипербарического бупивакаина, частота гипотонии ниже, чем у тех, кто получал 10 мг гипербарического бупивакаина.[24] Серхан и др. . изучали спинальную анестезию гипербарическим бупивакаином (10 мг), последовательное введение гипербарического и изобарического бупивакаина (по 5 мг каждого) и изобарического бупивакаина (10 мг). Они не обнаружили существенной разницы между всеми группами. [25]

Desai и др. . [26] изучали две группы, в каждой из которых 24 роженицы получали спинномозговую инъекцию для CS. Первая группа получала 10 мг гипербарического бупивакаина плюс 100 мкг морфина плюс 15 мкг фентанила, смешанных в шприце перед введением.Вторая группа получала 10 мг бупивакаина через один шприц, затем 100 мкг морфина плюс 15 мкг фентанила через отдельный шприц. Они сообщили, что пациенты, получавшие смешанные лекарства, имели более высокий уровень сенсорного блока к холоду, чем пациенты, получавшие отдельные инъекции, и могут быть связаны с более высокой послеоперационной потребностью в опиоидах. В нашей работе существенной разницы в уровнях не было. Это различие могло быть связано с тем, что они вводили гипербарический бупивакаин до опиоидов, уровень которого снизился до более низких во время инъекции опиоидов и был более низким в отдельной группе.В их исследовании частота гипотонии была незначительно ниже в группе S. Они не изучали частоту неудовлетворительной блокады, которая встречается редко и требует большего числа групп.

Аталай и др. . сравнивали 10 мг гипербарического бупивакаина интратекально с 5 мг простого бупивакаина плюс 35, 30 или 25 мг меперидина, вводимых последовательно. Они пришли к выводу, что последовательное введение 5 мг простого бупивакаина и 25 мг меперидина интратекально обеспечивало лучшую стабильность артериального давления и меньшую частоту побочных эффектов, чем один гипербарический бупивакаин в дозе 10 мг.[27] Однако они не сравнивали одни и те же лекарства, смешанные и последовательно.

Насколько нам известно, мы первые, кто сравнил смешанный и последовательный интратекальный гипербарический бупивакаин с фентанилом с использованием тех же доз в CS.

В будущих исследованиях будет лучше указывать температуру вводимых лекарств, поскольку она может повлиять на баричность, а также следует указывать скорость введения лекарств.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Можно сделать вывод, что раздельная интратекальная инъекция фентанила и гипербарического бупивакаина обеспечивала значительное улучшение качества сенсорного блока и значительное снижение частоты гипотонии по сравнению с инъекцией смешанных препаратов.

Финансовая поддержка и спонсорство

Нет.

Конфликты интересов

Конфликты интересов отсутствуют

Благодарности

Авторы благодарят доктора Хасана Али Аль Салеха, Университет Макмастера, за щедрую поддержку и ценную помощь в статистическом анализе. Авторы также благодарят доктора Эссама Або Бейкера, консультанта по анестезии больницы доктора Солимана Факиха, за помощь в исследовании.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Туркмен А., Моралар Д.Г., Али А., Алтан А.Сравнение анестезирующих эффектов интратекального введения левобупивакаина + фентанила и бупивакаина + фентанила во время кесарева сечения. Ближний Восток J Anaesthesiol. 2012; 21: 577–82. [PubMed] [Google Scholar] 2. Хавас Ф., Орхан Сунгур М., Йенигюн Ю., Карадениз М., Килич М., Озкан Сейхан Т. Спинальная анестезия при плановом кесаревом сечении связана с более коротким пребыванием в больнице по сравнению с общей анестезией. Agri. 2013; 25: 55–63. [PubMed] [Google Scholar] 3. Сайна А.М., Эндрю М., Эммет Р.С., Миддлтон П., Симмонс С.В. Методы профилактики гипотонии при спинальной анестезии при кесаревом сечении.Кокрановская база данных Syst Rev.2006; 4: CD002251. [PubMed] [Google Scholar] 4. Paech MJ. Следует ли под другим углом зрения вести себя беременным женщинам во время родов. Пытаетесь избежать «гипотензивного синдрома лежа на спине»? Анаэст Интенсивная терапия. 2008; 36: 775–7. [PubMed] [Google Scholar] 5. Гурьянов В.А., Шумов И.В. Нейро-вегетативное торможение и оптимизация управления гемодинамикой во время кесарева сечения под спинальной анестезией у беременных с гестозом. Анестезиол Реаниматол. 2012; 6: 48–51. [PubMed] [Google Scholar] 6.Тьяги А., Кумар А., Гиротра Г., Сетхи А. К.. Комбинированное спинальное эпидуральное и эпидуральное увеличение объема: взаимодействие положения пациента и гипербарического бупивакаина. J Anaesthesiol Clin Pharmacol. 2011; 27: 459–64. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 7. Hwang JW, Oh AY, Song IA, Na HS, Ryu JH, Park HP и др. Влияние длительного бокового положения на индукцию спинальной анестезии при кесаревом сечении: рандомизированное контролируемое исследование. Минерва Анестезиол. 2012; 78: 646–52. [PubMed] [Google Scholar] 8.Тамилсельван П., Фернандо Р., Брей Дж., Соди М., Коламб М. Влияние кристаллоидной и коллоидной преднагрузки на сердечный выброс у роженицы, перенесшей плановое кесарево сечение под спинальной анестезией: рандомизированное испытание. Anesth Analg. 2009; 109: 1916–21. [PubMed] [Google Scholar] 9. Джордж РБ, Маккин Д., Коламб Миссури, Хабиб А.С. Определение 90% эффективной дозы фенилэфрина для лечения гипотонии, вызванной спинальной анестезией, у рожениц, перенесших кесарево сечение. Anesth Analg.2010; 110: 154–8. [PubMed] [Google Scholar] 10. Sia AT, Tan HS, Sng BL. Замкнутая автоматизированная система с двойным вазопрессором для лечения гипотонии во время спинальной анестезии при кесаревом сечении: предварительное исследование. Анестезия. 2012; 67: 1348–55. [PubMed] [Google Scholar] 11. Джайн К., Бхардвадж Н., Шарма А., Каур Дж., Кумар П. Рандомизированное сравнение влияния низких доз спинномозговой или общей анестезии на газы пуповинной крови во время кесарева сечения плодов с задержкой роста и нарушением допплеровского кровотока.Eur J Anaesthesiol. 2013; 30: 9–15. [PubMed] [Google Scholar] 12. Палмер С.М., Корк Р.К., Хейс Р., Ван Марен Г., Алвес Д. Отношение доза-реакция интратекального фентанила для обезболивания родов. Анестезиология. 1998. 88: 355–61. [PubMed] [Google Scholar] 13. Grant GJ, Susser L, Cascio M, Moses M, Zakowski MI. Гемодинамические эффекты интратекального фентанила у доношенных рожениц. Дж. Клин Анест. 1996. 8: 99–103. [PubMed] [Google Scholar] 14. Уайт Б. Измерение удовлетворенности пациентов: как это сделать и зачем беспокоиться.Fam Pract Manag. 1999; 6: 40–4. [PubMed] [Google Scholar] 15. Bromage PR, Burfoot MF, Crowell DE, Pettigrew RT. Качество эпидуральной блокады. I. влияние физических факторов. Br J Anaesth. 1964; 36: 342–52. [PubMed] [Google Scholar] 16. Kraemer HC, Theimann S. Статистический анализ мощности в исследованиях. Ньюбери-Парк, Калифорния: Сейдж; 1987. Сколько предметов? [Google Scholar] 17. Шривастава У., Кумар А., Ганди Н.К., Саксена С., Датта Д., Чандра П., Сингх С. Гипербарический или простой бупивакаин в сочетании с фентанилом для спинномозговой анестезии во время кесарева сечения.Индийский J Anaesth. 2004. 48: 44–6. [Google Scholar] 18. Коннолли С., МакЛеод Г.А., Уайлдсмит Дж. А. Спинальная анестезия при кесаревом сечении бупивакаином 5 мг / мл (-1) в глюкозе 8 или 80 мг / мл (-1) Br J Anaesth. 2001; 86: 805–7. [PubMed] [Google Scholar] 19. Helmi M, Uyun Y, Suwondo BS, Widodo U. Сравнение интратекального использования изобарического и гипербарического бупивакаина во время операции на нижней части живота. J Anesthesiol. 2014; 2014: 4. [Google Scholar] 20. Мартин Р., Фригон С., Кретьен А., Тетро Дж. П. Спинальная блокада развивается быстрее при приеме изобарического, чем гипербарического, бупивакаина.Может J Anaesth. 2000; 47: 43–6. [PubMed] [Google Scholar] 21. Kyokong O, Charuluxananan S, Pothimamaka S, Leerapun R. Гипотония при спинальной анестезии при кесаревом сечении: сравнение 0,5% гипербарического бупивакаина и 5% гипербарического лидокаина. J Med Assoc Thai. 2001; 84 (Приложение 1): S256–62. [PubMed] [Google Scholar] 22. Хабиб А.С., Дейл М., Эмерсон С., Аллсагер С., Виктория А. Уменьшение боли во время кесарева сечения после добавления нейроаксиальных опиатов: аудит с обратной связью. Int J Obstet Anesth. 2002; 11:17.[Google Scholar] 23. Хала М., Хуан С., Виктор В. Спинальные добавки при субарахноидальной анестезии при кесаревом сечении. Гл. 4. InTech. 2014: 67. [Google Scholar] 24. Cesur M, Alici HA, Erdem AF, Borekci B, Silbir F. Спинальная анестезия с последовательным введением простого и гипербарического бупивакаина обеспечивает удовлетворительную анальгезию с гемодинамической стабильностью при кесаревом сечении. Int J Obstet Anesth. 2008; 17: 217–22. [PubMed] [Google Scholar] 25. Серхан Ю.Б., Волкан Х., Дилек О.Р., Эврим Б.С., Эрдоган К.Г., Седат Х. и др.Влияние на частоту гипотонии: гипербарический, изобарический и комбинации бупивакаина для спинальной анестезии при кесаревом сечении. Turk J Med Sci. 2012; 42: 307. [Google Scholar] 26. Desai S, Lim Y, Tan CH, Sia AT. Рандомизированное контролируемое исследование гипербарического бупивакаина с опиоидами, вводимых в виде смеси или последовательно, для спинномозговой анестезии при кесаревом сечении. Анаэст Интенсивная терапия. 2010; 38: 280–4. [PubMed] [Google Scholar] 27. Аталай С., Аксой М., Аксой А.Н., Доган Н., Курсад Х. Сочетание интратекального бупивакаина и меперидина во время кесарева сечения для предотвращения гипотонии, вызванной спинальной анестезией, и других побочных эффектов.J Int Med Res. 2010; 38: 1626–36. [PubMed] [Google Scholar] Объемное микродозирование

с LSD

Многие люди принимают микродозы ЛСД, разрезая таблетки на крошечные кусочки и угадывая дозировку по размеру бумаги. Однако это не идеально по нескольким причинам:

LSD не всегда укладывается идеально ровно. В процессе производства листы замачивают в жидком растворе ЛСД, затем сушат, но иногда сушка не происходит идеально равномерно, в результате чего одни участки бумаги становятся немного более концентрированными, чем другие.Поскольку мы очень чувствительны к ЛСД и говорим о таких крошечных количествах, когда дело доходит до микродозирования, концентрация на одной таблетке может сильно варьироваться от одного миллиметра к другому.
Вы, наверное, не очень точны с ножницами. Если у вас нет робота для микрорезки или чего-то в этом роде, вероятно, будет сложно точно вырезать тот идеальный кусок таблетки размером 8 мкг, который является вашей идеальной микродозой.
Это требует возраста и риска деградации вашего ЛСД. Трудно разрезать крошечный кусочек бумаги на еще более мелкие кусочки — и, если вы не носите перчаток, возможно, что ваша потная хватка может начать портить язычок во время резки.

Не самый точный…

По этим причинам более точным (и простым) способом микродозирования ЛСД является объемное дозирование. Это действительно просто. Все, что вам нужно, это небольшая бутылочка, шприц на 1 мл и немного дистиллированной воды или спирта.

Налейте в маленькую бутылочку 10 мл дистиллированной воды или спирта. Некоторые люди говорят, что алкоголь лучше сохраняет ЛСД, другие говорят, что дистиллированная вода — это хорошо. Мы даже слышали о некоторых людях, использующих смесь спирта и воды в соотношении 50/50.Что бы вы ни делали, не используйте воду из-под крана, так как она разрушит ваш ЛСД.

Что касается алкоголя, то чем проще, тем лучше. Водка отличная. Если вам удастся найти чистый этанол, он отлично подойдет, хотя вы, вероятно, захотите его немного разбавить.

К вашим 10 мл воды / спирта добавьте одну таблетку ЛСД — должно быть 100 мкг.

Немного встряхните флакон и оставьте его при комнатной температуре или в холодильнике на день или два. Если бутылка прозрачная, оберните ее алюминиевой фольгой, чтобы избежать разложения ЛСД светом.

Через пару дней ваш ЛСД растворяется в жидкости (ПРИМЕЧАНИЕ: бумага все еще будет на месте — однако ЛСД, который был нанесен на промокательную бумагу, растворился в дистиллированной воде).

Теперь вам просто нужно взять шприцем 1 мл на дозу 10 мкг. Если вы используете микродозу менее 10 мкг, просто масштабируйте ее до своего объема — 0,6 мл — 6 мкг, 0,8 мл — 8 мкг и так далее.

Вы не хотите, чтобы кто-то пил вашу «особую» водку

Не забудьте завернуть в фольгу для защиты от света!

Ленивая версия
Если у вас нет шприца на 1 мл и вы не хотите его покупать, вы можете просто увеличить объемы.Поместите таблетку 100 мкг в 150 мл воды / спирта, затем используйте рюмку на 15 мл, чтобы принять дозу 10 мкг.

Храните бутылку при комнатной температуре или в холодильнике. ЛСД не любит резких перепадов температуры, поэтому, что бы вы ни делали, не замораживайте его. Убедитесь, что бутылка находится в темноте.

Это должно длиться как минимум несколько месяцев — и, возможно, дольше, если вы употребляли алкоголь.

Если вы заинтересованы в правильном применении ответственного микродозирования, подумайте о том, чтобы пройти наш онлайн-курс по микродозированию, чтобы подробно изучить все, что вам нужно знать.

Счастливого микродозирования!

Игольчатый миниатюрный оптоэлектронный датчик для обнаружения рака поджелудочной железы

Реферат

Рак поджелудочной железы — один из самых смертоносных видов рака, 5-летняя выживаемость <10%. Текущий подход к подтверждению диагноза ткани, тонкоигольная аспирация под эндоскопическим ультразвуковым контролем (EUS-FNA), требует трудоемкого качественного цитологического анализа и может быть ограничен из-за ошибки выборки. Мы спроектировали и сконструировали миниатюрный оптоэлектронный датчик для помощи in situ, в реальном времени и объективной оценки тканей поджелудочной железы человека во время EUS-FNA.Проверенный прототип датчика, совместимый с полой иглой калибра 19, коммерчески доступной для EUS-FNA, был сконструирован с использованием микросхем оптоэлектронных микросхем и методов микротехнологии для выполнения оптического зондирования ткани на нескольких участках. В нашей лабораторной проверке и пилотной проверке во время операции на свежевырезанных тканях поджелудочной железы человека (четыре пациента) изготовленные датчики показали сопоставимые характеристики с нашей предыдущей системой на основе волокон. Гибкость конфигурации источник-детектор с использованием микросхем микроскопических размеров потенциально позволяет использовать различные методы светового зондирования внутри ограниченного канала, такого как полая игла или эндоскопия.

ВВЕДЕНИЕ

Аденокарцинома протока поджелудочной железы (PDAC) является третьей по значимости причиной смерти от рака в США в 2019 году ( 1 ) и единственным крупным раком с выживаемостью менее 10%. Смертность от рака поджелудочной железы, согласно прогнозам, удвоится в течение следующих 20 лет и станет второй ведущей причиной смерти от рака к 2030 году ( 2 ). Современные методы диагностики, включая компьютерную томографию, магнитно-резонансную томографию и эндоскопическое ультразвуковое исследование (ЭУЗИ), имеют клинически значимые ограничения в предоставлении точного диагноза либо из-за невозможности идентифицировать небольшие поражения, либо из-за невозможности точно дифференцировать опухоли как аденокарциному или хронический панкреатит (ХП ) (воспаление поджелудочной железы) ( 3 ).

Проблемы с точной патологической диагностикой подозреваемого новообразования поджелудочной железы могут возникать из-за характерной стромальной реакции с интенсивным фиброзом, связанной как с PDAC, так и с CP. Эта общая черта заметно усложняет попытки дифференцировать похожие по внешнему виду поражения на изображениях, даже с цитологической оценкой EUS – тонкоигольной аспирации (EUS-FNAs), поскольку проблемы при нацеливании на новообразование проблематичны ( 4 ). Кроме того, EUS-FNA страдает низкой клеточностью, что приводит к множественным вставкам иглы FNA с небольшим количеством клеток для исследования ( 5 ).Кроме того, хорошо дифференцированные опухоли могут затруднять субъективную цитологическую оценку.

Оптическая биопсия с помощью световой спектроскопии была предложена в качестве дополнительного инструмента к EUS-FNA для минимально инвазивной количественной оценки. Мультимодальный подход, сочетающий диффузное отражение и стационарную флуоресцентную спектроскопию, позволил точно отличить злокачественные ткани от доброкачественных в исследованиях свежевырезанных тканей поджелудочной железы с использованием гистопатологического анализа в качестве золотого стандарта ( 6 — 8 ).Кроме того, в пилотном исследовании неповрежденной поджелудочной железы in vivo во время операции на поджелудочной железе ( 9 ) наша группа продемонстрировала хорошее соответствие между измерениями in vivo и ex vivo. Недавно одна группа продемонстрировала техническую осуществимость спектроскопии отражения одного волокна во время процедуры EUS-FNA ( 10 ). Другая группа также использовала спектроскопию светорассеяния с оптоволоконным датчиком через полую иглу FNA во время EUS-оценки кистозных новообразований поджелудочной железы и продемонстрировала 95% чувствительность ( 11 ).Однако оптоволоконный зонд, доставляемый через полые иглы FNA (калибр 19 или 22), обеспечивает только одноточечное измерение с очень ограниченным оптическим объемом опроса, образованным одним волокном или двумя волокнами с коротким интервалом обнаружения источника. Точная оценка потребует повторных вводов иглы и волокна, что может удлинить всю процедуру и увеличить вероятность инфекции и / или панкреатита.

Здесь мы спроектировали, изготовили и проверили концепцию миниатюрного оптоэлектронного (OE) датчика FNA 19 калибра (внутренний диаметр, ~ 850 мкм), совместимого с иглой, который объединяет несколько датчиков и пару источников света. [светодиод (LED)] и детектор (фототранзистор) для измерения объема.Чтобы построить и протестировать всю сенсорную систему, мы (i) выполнили инженерный анализ оптического и теплового дизайна, (ii) изготовили микромасштабную печатную плату (μPCB) и собрали светодиодные и фототранзисторные микросхемы, (iii) разработали индивидуальную электронику. и программа графического интерфейса пользователя (GUI), (iv) охарактеризовала оптические и электрические характеристики собранного датчика, (v) проверила производительность всей системы в жидких фантомах, имитирующих ткань, по сравнению с референтной волоконно-оптической спектроскопией диффузного отражения (DRS). ) система и (vi) подтверждена на свежевырезанных тканях поджелудочной железы во время процедуры Уиппла или панкреатэктомии (всего 24 участка ткани у четырех пациентов).Следующий раздел структурирован в таком порядке, чтобы показать результаты каждого шага, за исключением шагов (ii) и (iii), которые описаны в разделе «Материалы и методы».

РЕЗУЛЬТАТЫ

Концепция дизайна

Рисунок 1A иллюстрирует концепцию многоточечного оптического зондирования через миниатюрный датчик оригинального оборудования во время процедуры EUS-FNA. Через окно с боковым вырезом на игле FNA в коммерческом устройстве EUS-FNA (EchoTip ProCore HD, Cook Medical) несколько датчиков, размещенных в боковом направлении, могут исследовать ткани, окружающие иглу.Конструкция нашего оригинального датчика основана на наших предыдущих исследованиях с использованием DRS, которые продемонстрировали, что соотношение интенсивности отражения между 460 и 650 нм ( R ₄₆₀/ R ₆₅₀) имеет диагностический потенциал для отличия злокачественных тканей от доброкачественных. ткани ( 6 , 12 ). Наблюдаются различия в спектрах диффузного отражения (от 400 до 750 нм), измеренных на трех разных типах ткани поджелудочной железы, включая аденокарциному (PDAC), ХП и нормальные ткани из 105 участков у 22 пациентов (рис.1B) ( 8 ), а вычисленное значение R ₄₆₀/ R ₆₅₀ значительно различается между тремя типами тканей (рис. 1C). Хотя эти результаты упрощают реализацию датчика с использованием одного фототранзистора и последовательного освещения двух светодиодов с дискретными длинами волн, объединение всех компонентов в миниатюрной форме, которая может поместиться в иглу 19-го калибра, является сложной задачей. На рисунке 1D показана схема нашего миниатюрного датчика оригинального качества, совместимого с иглой FNA 19 калибра.Единый чувствительный элемент состоит из одного фототранзистора, а также одного светодиода с длиной волны 460 нм и одного светодиода с длиной волны 650 нм, каждый из которых расположен на расстоянии ~ 660 мкм от фототранзистора с каждой стороны. Это расстояние такое же, как и у нашей предыдущей оптоволоконной системы спектроскопии отражения ( 6 — 8 ), при сохранении той же глубины проникновения (около нескольких сотен микрометров в поверхностном слое) для целей проверки. . Микропроцессорная плата микропроцессора обеспечивает основу для сборки микросхем микропроцессора оригинального изготовления за счет осажденного эвтектического сплава и электрических соединений.Несмотря на то, что монолитное изготовление светодиода и фотодетектора на одной пластине технически возможно для биомедицинских приложений ( 13 ), мы выбрали неупакованные светодиоды на уровне кристалла и фототранзистор, доступные на рынке, чтобы снизить сложность и стоимость производственного процесса. ( 14 ). Учитывая, что размер одного чувствительного элемента составляет ~ 2 мм на 0,6 мм, несколько чувствительных элементов могут быть размещены в ряд внутри полой иглы FNA. Сверхмалый форм-фактор датчика позволяет интегрировать его в стилет, тонкую гибкую направляющую, заполняющую полый канал во время введения иглы через эндоскопию и удаляемую перед FNA.Эта стратегия сборки позволит совместно локализовать оптическое зондирование и FNA внутри одной иглы. Сценарий потенциального клинического пользователя показан на рис. S1. Обратите внимание на то, что поскольку основное внимание в этом исследовании по проверке концепции уделяется технической возможности миниатюрного оригинального датчика, здесь изготовленный оригинальный датчик прикрепляется непосредственно к внутренней части иглы, а не на стилете.

Рис. 1 Конструктивная концепция миниатюрного датчика оригинального размера, совместимого с иглой.

( A ) На рисунке показан сценарий применения миниатюрного датчика, совместимого с иглой 19-го калибра, через коммерческое устройство EUS-FNA для увеличения объема оптического опроса с несколькими чувствительными блоками.( B ) Средние нормализованные спектры отражения, полученные из наших предыдущих измерений DRS ex vivo на тканях поджелудочной железы человека (всего 22 пациента и 105 участков, включая нормальную ткань, CP и PDAC), показывают, что форма спектра каждого типа ткани различна. . Длины волн, показывающие максимальную (заштрихованный синим) и минимальный (заштрихованный красным) различие между различными тканями, могут быть выбраны для логометрического анализа. ( C ) Коэффициенты отражения ( R ₄₆₀/ R ₆₅₀ нм), вычисленные с помощью DRS, значительно различаются между тремя тканями поджелудочной железы (* P <0.001, критерий суммы рангов Вилкоксона). Планки погрешностей - это SE. ( D ) Трехмерная (3D) концепция дизайна миниатюрного оригинального датчика.

Оптическая конструкция

Неупакованные светодиодные чипы на уровне кристалла были выбраны для 460 нм (460DA3547, Cree) и 650 нм (C4L 12T5, Chip4Light) из-за их достаточного светового излучения при относительно низком потреблении электроэнергии. Мы также выбираем неупакованный фототранзистор (T1090P, Vishay) с высокой эффективностью обнаружения излучения и адекватной чувствительностью в видимом диапазоне.Возможность оптического зондирования с использованием выбранных компонентов оригинального оборудования была подтверждена расчетами с помощью встроенной функции Монте-Карло (MC), доступной через коммерческое программное обеспечение для трассировки лучей Zemax (Zemax 12). Моделирование предсказывает, что когда светодиод излучает мощность 0,5 мВт с распределением по углу, фототранзистор обнаруживает мощность> 3 мВт / см ², создавая фототок> 50 мкА. Учитывая, что темновой ток фототранзистора составляет 1 нА, ожидаемое теоретическое отношение сигнал / шум (SNR) составляет> 90 дБ; однако ожидается, что SNR будет ниже в результате дополнительных источников шума от специального драйвера светодиода и трансимпедансного усилителя (TIA).Кроме того, моделирование MC визуализировало траектории отдельных фотонов, обнаруженных фототранзистором, как показано на фиг. 2A, представляя оптический объем опроса, сформированный геометрией источника-детектора тока. Глубина проникновения оценивается примерно в ~ 350 и ~ 500 мкм для 460 и 650 нм, соответственно, а общий объем опроса оценивается в ~ 0,25 мм ³, предполагая, что объем представляет собой полусферу. Этот расчетный объем близок к смоделированному объему, опрошенному оптоволоконным датчиком, использованным в нашем предыдущем исследовании, а также сопоставим с объемом размазанного образца ткани, полученным во время EUS-FNA.

Рис. 2 Расчетный анализ дизайна.

Средства вычислительного проектирования выполняют инженерный анализ и подтверждают возможность оптического зондирования и термобезопасность миниатюрного датчика. ( A ) Моделирование MC визуализирует путь, пройденный фотонами (синий, 460 нм; красный, 650 нм), собранными фототранзистором внутри модели ткани поджелудочной железы. ( B ) Трехмерная модель встроенного датчика для анализа теплопередачи с учетом рассеивания тепла от двух светодиодов и теплоемкости каждого компонента.( C и D ) Вид сбоку распределения температуры после (C) 1 с включения светодиода и (D) в равновесии примерно через 10 с показывает, что максимальное повышение температуры составляет всего 1 ° прямо на светодиодах и температуре увеличение прилегающих тканей поджелудочной железы минимально. ( E ) Профиль максимальной температуры временного ряда показывает, что температура стабилизируется через 10 с при непрерывном свечении светодиода.

Кроме того, мы оценили способность различать три различных типа тканей.Моделирование MC выполняется на оптических моделях нормальных тканей поджелудочной железы, CP и PDAC при 460 и 650 нм. Интенсивность света светодиодов установлена на 0,6 и 0,5 мВт для светодиодов с длиной волны 460 и 650 нм, соответственно, в соответствии с их техническими характеристиками. Смоделированные R ₄₆₀/ R ₆₅₀ составляют 0,76, 0,91 и 1,21 для нормальной поджелудочной железы, CP и PDAC, соответственно. Чтобы учесть разницу в интенсивности возбуждения двух светодиодов, R ₄₆₀/ R ₆₅₀ PDAC масштабируется до 0.71 (усредненное соотношение из экспериментов, показанных на рис. 1C), что дает 0,44 и 0,53 для нормальных тканей поджелудочной железы и CP, соответственно. Этот результат показывает, что наш датчик OE, измеряющий коэффициент интенсивности отражения на определенных длинах волн, может отличить PDAC как от нормальной поджелудочной железы, так и от CP. Наконец, чтобы исследовать чувствительность к температуре окружающей среды, мы смоделировали коэффициенты отражения, используя оптические свойства с длинами волн, которые были на 5 нм больше, чтобы имитировать увеличенную длину волны пикового излучения, соответствующую повышению температуры на 50 ° C ( 15 ).Смоделированные R ₄₆₅/ R ₆₅₅ всех трех типов тканей находятся в пределах 1% от R ₄₆₀/ R ₆₅₀, подтверждая стабильные оптические характеристики датчика относительно потенциальной температуры. вариации в тканевой среде in vivo.

Тепловая конструкция

Излучение светодиода выделяет тепло из-за рассеяния энергии при преобразовании электрической энергии в оптическую. Таким образом, критически важным фактором при проектировании является обеспечение отсутствия повреждения тканей от тепла во время работы датчика OE в тканях поджелудочной железы человека.Чтобы оценить изменения температуры из-за излучения светодиода, теплопередача была смоделирована с использованием анализа конечных элементов, реализованного с помощью программного обеспечения Ansys (Ansys). Узел датчика, состоящий из двух светодиодов, расположенных на расстоянии 1,2 мм друг от друга на кремниевой пластине, прикрепленной к направляющему стилету, был смоделирован с использованием реалистичных размеров и свойств, связанных с теплопередачей (рис. 2B; см. Материалы и методы). Мощность светодиода была установлена на 1 мВт (удвоенная мощность, используемая для оптического моделирования) при работе с 10 мВт электрической мощности.Через 1 секунду свечения обоих светодиодов максимальная температура достигает 37,4 ° C (рис. 2C). Одна секунда — это достаточно больший временной масштаб, чем ожидаемое время оптического зондирования (<0,5 с) для обратной связи в реальном времени. В то время как максимальная температура возникает внутри корпуса светодиода, максимальная температура окружающих тканей поджелудочной железы составляет около 37,0 ° C, что меньше увеличения на 1 ° C по сравнению с начальной температурой ткани 36,5 ° C. В стационарной модели температура стабилизируется на уровне 38,1 ° C за 10 с, а максимальная температура ткани составляет около 37.6 ° C (рис. 2, D и E). Также следует отметить, что область изменения температуры ограничена 5 мм вокруг датчика. Эти результаты демонстрируют, что наш датчик способствует незначительному повышению температуры в очень ограниченной области и вряд ли вызовет повреждение тканей. Это моделирование предполагает идеальный контакт между светодиодами и окружающими тканями, что указывает на отсутствие теплового контактного сопротивления. На самом деле максимальная температура ткани будет еще больше снижена.

Спроектированные устройства

На рис. 3 показан экспериментальный прототип датчика оригинального оборудования, совместимого с иглой.Модуль портативного датчика (рис. 3A) состоит из узла датчика на микропроцессорной плате, иглы FNA 19 калибра (ECHO-HD-19-C, Cook Medical) и соединительной печатной платы для электрического подключения к настраиваемой управляющей электронике. и место, которое можно удерживать пальцем (рис. 3B). На рисунке 3D показано увеличенное изображение узла датчика внутри иглы. В зависимости от количества светодиодов и количества чувствительных элементов возможны различные конструктивные конфигурации, включая базовый чувствительный блок со светодиодами с длиной волны 460 и 650 нм (рис.3E), усовершенствованный блок с дополнительным светодиодом ближнего инфракрасного диапазона (NIR; 785 нм) (рис. 3F) и двухблочный модуль, который выравнивает два суб-одиночных блока (рис. 3G). В демонстрационных целях все показанные здесь датчики отображаются до процесса капсулирования эпоксидной смолой, который является последним шагом для создания прозрачного защитного окна для датчика. Дополнительные сведения о процессе изготовления и сборки описаны в разделе «Материалы и методы», а пошаговый рецепт можно найти в примечаниях S1 и S2 и на рис.S2.

Рис. 3 Изготовленные оригинальные устройства и характеристика их основных характеристик.

Миниатюрный датчик оригинального качества, совместимый с иглой 19 калибра, был успешно разработан для экспериментального исследования по выявлению рака поджелудочной железы. Охарактеризованы основные электрические и оптические характеристики собранного датчика OE. ( A ) Портативный сенсорный модуль состоит из иглы 19-го калибра и изготовленной микроплатежной платы, на которой собраны оригинальные компоненты. Микропроцессорная плата подключается к другой крупногабаритной печатной плате, чтобы обеспечить электрическое соединение с управляющей электроникой.( B ) Фотография сенсорного модуля, удерживаемого вручную ( C ), сравнение размеров с монетами США. ( D ) Увеличенная фотография (масштабная линейка, 1 мм) отображает один тип чувствительного элемента, состоящий из одного фототранзистора и трех светодиодов, которые показаны через окошко с вырезом сбоку полой иглы (внутренний диаметр 850 мкм) в коммерческой установке EUS-FNA. (От E до G ) Световое излучение светодиодов от различных типов изготовленных датчиков. (E) Моноблочные светодиоды типа 1: 460- и 650-нм светодиоды, расположенные по обе стороны от одного фототранзистора; (F) моноблочный тип 2: светодиод с длиной волны 460 нм, расположенный с одной стороны, и светодиод с длиной волны 650 нм и светодиод NIR, расположенный с другой стороны одного фототранзистора; (G) сдвоенный блок: два одиночных блока (тип 1) с расстоянием ~ 5 мм между двумя фототранзисторами.( H ) Кривые прямого напряжения в зависимости от прямого тока трех собранных светодиодов ( n = 5 для светодиодов с длиной волны 460 и 650 нм и n = 1 для светодиодов с длиной волны 785 нм) ( I ) ток и оптическая мощность трех светодиодов в сборе. ( J ) Длины волн излучения трех светодиодов, измеренные спектрофотометром. ( K ) Напряжение, обнаруживаемое фототранзистором при постоянной мощности светодиода, увеличивается с увеличением концентрации рассеивателя [интралипида (IL)] как для синего, так и для красного светодиода.Планки погрешностей соответствуют стандартным отклонениям. Фото: Сын Юп Ли и Брэндон Байер, Мичиганский университет.

Электрические и оптические характеристики

Были оценены электрические и оптические свойства светодиода и фототранзистора, собранного на изготовленной микроплате. На рисунке 3H показаны кривые I _f (прямой ток) — V _f (прямое напряжение) кривые каждого светодиода. Измеренные оптические мощности от каждого светодиода линейны по отношению к входному прямому току (рис.3I). Чтобы оценить эффективность сборки светодиода, мы измерили КПД колодца, определяемый как выходная оптическая мощность, деленная на входную электрическую мощность, 21,7 ± 2,9% (для 460 нм, ± стандартное отклонение), 21,2 ± 4,2% (для 650 нм ) и 22,1% (для 785 нм). Длины волн пиков, измеренные спектрометром, составляют 458 ± 15 нм (пик ± полная ширина на полувысоте), 644 ± 15 нм и 783 ± 18 нм (рис. 3J). Характеристики собранных фототранзисторов оценивали косвенно путем измерения напряжения обнаружения в условиях постоянного выхода светодиода на фантом, имитирующий ткань, с возрастающими концентрациями 20% интралипида (рассеивающего агента).Показание напряжения обнаружения увеличивается с увеличением концентрации (рис. 3K).

Исследование жидкого фантома, имитирующего ткань.

Оптическая способность распознавания была оценена с использованием набора жидких фантомов, имитирующих ткань. Фантомы представляли собой смеси деионизированной воды и микросфер (рассеивающий агент), титрованные порошком гемоглобина с шагом 5 мкМ (фиг. 4A) для изменения спектра отражения (фиг. 4B). Каждый фантом был измерен обеими разработанными нами OE-системами с использованием одного моноблочного датчика (рис.2E), один сдвоенный датчик (рис. 2G) и нашу оптоволоконную систему DRS ( 12 , 16 ). На рис. 4B показаны измеренные спектры отражения от каждого фантома (сплошные линии) и измеренные коэффициенты отражения системой OE с использованием однокомпонентного датчика на 460 и 650 нм (производители алмазов), что указывает на превосходное соответствие между двумя устройствами. Когда концентрация гемоглобина увеличивается с 10 до 40 мкМ, R ₄₅₀ уменьшается на ~ 30%, в то время как R ₆₅₀ остается неизменным. R ₄₆₀/ R ₆₅₀, измеренный тремя независимыми сенсорными блоками, хорошо согласуется с измеренным DRS R ₄₆₀/ R ₆₅₀ на каждом фантоме, как показано на рис. 4C. Несмотря на небольшие различия в абсолютном значении R ₄₆₀/ R ₆₅₀ между различными сенсорными блоками, измерения OE R ₄₆₀/ R ₆₅₀ показывают линейную корреляцию с измерениями DRS (Pearson’s корреляция = 0.96; Рис. 4D). Измеренные отношения сигнал / шум составляют 55,92 ± 2,07 и 55,98 ± 3,61 дБ для 460 и 650 нм соответственно. После погружения в жидкий фантом, который демонстрирует водонепроницаемость, не было обнаружено поломки или ухудшения характеристик изготовленного сенсора.

Рис. 4 Результаты лабораторных экспериментов с фантомом, моделирующим ткань.

( A ) Разработанная OE сенсорная система была проверена с использованием набора жидких фантомов с различными концентрациями гемоглобина ([HbT]) по сравнению с нашей системой DRS.( B ) Измеренная относительная отражательная способность на обеих длинах волн с помощью DRS (сплошные линии) и сенсорной системы OE (ромбовидные маркеры) сопоставимы для разных [HbT]. а.е., условные единицы. ( C ) Коэффициенты отражения R ₄₆₀/ R ₆₅₀ уменьшаются по мере увеличения [HbT] во всех трех одинарных чувствительных элементах: Два блока (OE D1 и OE D2) относятся к одному и тому же двойному датчику. датчик агрегата; третий (OE S) — от единичного датчика. ( D ) Усредненные значения R ₄₆₀/ R ₆₅₀, измеренные тремя установками OE и измеренные DRS R ₄₆₀/ R ₆₅₀ линейно коррелированы (корреляция Пирсона R = 0.96). Планки погрешностей представляют собой стандартные отклонения значений от трех единиц. Фотография предоставлена Сеунг Юп Ли, Мичиганский университет.

Пилотное исследование Ex vivo на людях

Наконец, мы проверили разработанные прототипы сенсоров OE на свежевырезанных тканях поджелудочной железы человека во время операции на поджелудочной железе (четыре пациента и 48 участков: 20 PDAC, 18 CP, 2 жировой ткани и 8 нормальной поджелудочной железы). как показано на рис. 5, от A до C. Для получения биопсии, совпадающей по месту, для гистологии золотого стандарта, датчик с двойным блоком (рис. 3G) без иглы FNA помещали на поверхность тканей поджелудочной железы.Одно размещение сдвоенного датчика последовательно измеряло два участка. Для каждой поджелудочной железы делали многократные (от четырех до семи раз) размещения. Во время гистопатологического анализа не наблюдалось физического повреждения измеренных участков ткани, что подтверждает безопасность оптического зондирования. Среди 48 измеренных участков 8 участков (1 нормальный, 3 CP и 4 PDAC) были исключены на основании наших заранее определенных критериев, учитывающих загрязнение крови, плохой контакт между тканью и датчиком или артефакты движения. Два участка представляли собой жировые ткани, не представляющие интереса в этом исследовании.

Рис. 5 Результаты пилотного исследования тканей человека.

Разработанная OE-сенсорная система была проверена в измерениях ex vivo на резецированной поджелудочной железе человека (всего четыре пациента и 48 участков) во время хирургии поджелудочной железы. Свежевырезанную поджелудочную железу человека измеряют с помощью изготовленного нами зонда OE с двойным датчиком [( A ) рака поджелудочной железы; ( B ) нормальный; ( C ) CP]. ( D ) График разброса коэффициентов отражения ( R ₄₆₀/ R ₆₅₀), полученный с использованием субъединицы 1 из всех участков и всех пациентов.( E ) Различия в измеренных коэффициентах отражения R ₄₆₀/ R ₆₅₀ между нормальным, CP и PDAC статистически значимы (* P <0,001 и ** P = 0,007 , Критерий ранговой суммы Вилкоксона). Планки погрешностей представляют собой SE. Фотография предоставлена Сеунг Юп Ли, Мичиганский университет.

На рис. 5D показаны измеренные коэффициенты отражения одной из субъединиц на отдельных участках у всех четырех пациентов. R ₄₆₀/ R ₆₅₀ PDAC (красный) соответствует (0.59–0,84) у трех разных пациентов, четко отличающихся от нормальных участков поджелудочной железы (черный, от 0,17 до 0,27). R ₄₆₀/ R ₆₅₀ CP находится между PDAC и нормальными тканями с относительно большим разбросом. На рисунке 5E показаны усредненные R ₄₆₀/ R ₆₅₀ всех участков трех типов ткани, демонстрируя, что коэффициенты отражения могут существенно различать три типа ткани поджелудочной железы.Более того, R ₄₆₀/ R ₆₅₀ каждого типа ткани, измеренные с помощью OE, сопоставимы с R ₄₆₀/ R ₆₅₀ (нормальное, 0,163 ± 0,027 по сравнению с 0,315 ± 0,013; CP 0,355 ± 0,041 против 0,430 ± 0,133; PDAC 0,661 ± 0,031 против 0,690 ± 0,029; среднее ± SE). Измеренные значения R ₄₆₀/ R ₆₅₀ для каждого типа ткани немного отличаются между двумя чувствительными блоками (субъединицы 1 и 2), но не существенно, как показано на рис.S3.

ОБСУЖДЕНИЕ

Мы предложили метод оптического зондирования, основанный на оригинальных чипах, чтобы преодолеть небольшую площадь выборки в поджелудочной железе, которую может исследовать волоконно-оптическая спектроскопия на основе иглы. Боковое выравнивание нескольких сенсорных блоков (пары источника и детектора) может одновременно оценивать несколько участков ткани поджелудочной железы в боковом окне иглы FNA. Для достижения сверхминиатюрного форм-фактора сенсорного блока, выходящего за рамки традиционных методов (т.е.(например, припаивание упакованных микросхем к печатной плате), неупакованные оригинальные чипы были непосредственно прикреплены к микроизготовленной печатной плате. Оптическое и тепловое моделирование подтвердило возможность оптического зондирования (SNR и способность различать типы тканей поджелудочной железы) и термостабильности. Интегрированная сенсорная система (микрозонд + специальная электроника + графический интерфейс пользователя) была проверена на фантомах, имитирующих ткань, и дополнительно проверена на свежевырезанных тканях поджелудочной железы человека. Таблица S1 суммирует общие технические характеристики разработанной системы, демонстрируя потенциал быстрой, многоузловой и количественной оценки ткани поджелудочной железы по сравнению с системой тримодальной оптической спектроскопии нашей группы, называемой спектрометром отражения и времени жизни флуоресценции (RFLS).Несмотря на огромное сокращение занимаемой площади (в 1000 раз меньше) и энергопотребления (в 100 раз меньше), наша система оригинального оборудования обещает заменить нашу тележку RFLS. Это дополнительно подтверждается нашим недавним исследованием ( 8 ), в котором обнаружено, что только спектроскопия отражения имеет сопоставимые диагностические характеристики с комбинированной спектроскопией отражения и флуоресценции.

Очевидная разница в коэффициенте отражения, измеренном OE ( R ₄₆₀/ R ₆₅₀) между тремя типами ткани поджелудочной железы, согласуется с нашими предыдущими исследованиями ex vivo на людях, измеряющими полный спектр отражения (от 420 до 750 нм) тканей поджелудочной железы ( 8 ).Используя полуэмпирическую аналитическую модель, эти исследования показали, что отличительные спектральные особенности связаны с изменениями в зависимости рассеяния от длины волны за счет морфологических изменений во время прогрессирования опухоли, таких как увеличение ядер или стромальная реакция с увеличением содержания коллагена ( 16 , 17 ). Ядра и коллаген являются двумя основными светорассеивателями внутри тканей, и их размер и плотность, как известно, значительно влияют на спектральные картины рассеяния ( 18 — 21 ).На основе нашего набора данных полного спектра существует ряд других дискретных длин волн, которые могут служить ценными альтернативами для нашего датчика OE. Например, NIR-области (от 690 до 750 нм) обеспечивают более глубокое проникновение в ткани из-за значительно более низкого поглощения гемоглобина. Более того, степень снижения отражательной способности за пределами 650 нм может обеспечить дополнительный показатель для дифференциации раковых тканей, поскольку наклон уменьшения отражательной способности между 650 и 760 нм отличается на рис. 1B.Эти возможности мотивируют интеграцию светодиода NIR в наш датчик в качестве технической демонстрации, хотя мы не проводили никаких проверок с использованием этой версии датчика.

Ключевыми ограничениями нашего исследования являются ограничения дизайна, необходимые для этой ранней стадии технической демонстрации, валидация ex vivo и небольшое количество пациентов. Таким образом, эту работу следует рассматривать как пилотное исследование для демонстрации проверенного концепции датчика оригинального оборудования, который проходит через иглу 19-го калибра. Хотя иссеченные ткани поджелудочной железы не будут отражать полностью неповрежденную тканевую среду (из-за потери кровеносных сосудов), гистопатология на уровне сайта может служить золотым стандартом для проверки нашего датчика OE.Во время наших измерений на резецированной поджелудочной железе показания датчика были чувствительны к ненадежному контакту между датчиком и тканями и артефактам движения из-за ручного удержания, что привело к исключению ~ 15% полученных данных. Однако этот вопрос не так важен для реальных клинических приложений, потому что наш датчик будет вставлен в объемные ткани поджелудочной железы. После введения иглы сенсорное окно OE будет окружено мягкой поджелудочной железой, образуя прочный, стационарный контакт, движение которого может контролироваться клиницистами, использующими EUS-FNA.Отображение коэффициента отражения в реальном времени может служить индикатором хорошего контакта. Наш набор данных ex vivo может служить ориентиром для нормального диапазона соотношений.

Для оценки ткани поджелудочной железы in situ во время процедуры EUS-FNA нашим следующим шагом является подключение к электросети через канал FNA длиной 1 м. Перед тестированием на месте важно также убедиться в механической целостности датчика, учитывая, что датчик OE будет подвергаться деформации изгиба, когда датчик EUS будет доставлен в двенадцатиперстную кишку или желудок.Ожидаемый максимальный угол изгиба, которому подвергается датчик OE, будет около 30 °, когда он выйдет из датчика EUS (рис. S4A). Хотя наши первоначальные испытания на кремниевой подложке на голом стилете подтвердили его способность выдерживать этот угол изгиба (рис. S4B), мы проведем более подходящие лабораторные испытания с использованием коммерческой эндоскопии EUS, устройства EUS-FNA и имитатор биологической эндоскопии ( 22 ). Наконец, мы расширим наше исследование предшественников PDAC, таких как муцинозные кисты поджелудочной железы, для ранней диагностики, что значительно улучшит результаты для пациентов и рекомендации по лечению.Наше предварительное исследование внутрипротокового папиллярного муцинозного новообразования (IPMN), предракового типа новообразования, которое может прогрессировать до PDAC, показало, что IPMN имеет сходные спектральные характеристики отражения с PDAC ( 17 ).

Основные технические проблемы при изготовлении датчика OE включают в себя (i) создание оптимального теплового профиля для процесса эвтектического соединения двух разных типов светодиодов, (ii) ручное выравнивание светодиодов и фототранзистора на контактных площадках микропроцессорной платы перед процесс склеивания и (iii) ручное нанесение эпоксидной смолы.Вместо того, чтобы выполнять процесс термического соединения с помощью инструмента для отжига, в будущем можно использовать устройство для склеивания с перевернутой микросхемой для более точного соединения. Процесс упаковки эпоксидной смолы вручную может способствовать незначительным различиям в измеренных значениях R _{460 нм}/ R _{650 нм} между каждым сконструированным сенсорным блоком (рис. S2P), поскольку трудно контролировать сформированную кривизну ультрафиолета (рис. S2P). УФ) — отверждаемая капля эпоксидной смолы на каждом светодиодах и фототранзисторах. Эта кривизна может влиять на излучение светодиода или угол обнаружения фототранзистора, что может изменять пути прохождения фотонов, определяя степень ослабления света за счет поглощения, как эффект числовой апертуры для DRS на основе волоконной оптики ( 23 ).

По сравнению с традиционным оптоволоконным световым зондированием в биологических тканях зондирование на основе оригинального оборудования имеет ряд преимуществ, перечисленных в таблице S4. Прежде всего, техника на основе оригинального оборудования обладает огромной гибкостью в геометрической конфигурации источника и детектора. Например, разделение источника и обнаружения, которое имеет решающее значение для определения отношения сигнал / шум, глубины запроса и зависимости с фазовой функцией в анализе DRS ( 24 ), ограничено в приложениях, где интересующим сайтам требуется очень ограниченный канал для доступа.Небольшое одиночное или двойное волокно (размер сердцевины <200 мкм) для источника и детектора с небольшим волокном может проходить через канал; однако они могут страдать от низкого отношения сигнал / шум или слишком малой глубины проникновения. Еще одно преимущество техники на основе оригинального оборудования - высокое отношение сигнал / шум. Поскольку излучение и обнаружение света происходят в точках измерения для датчиков OE, оптические потери могут быть меньше по сравнению с использованием оптических волокон к удаленному источнику и детектору и от них, что требует схемы связи между оптикой и волокнами ( 25 ).Таким образом, изготовленный нами датчик OE обеспечивает сопоставимое отношение сигнал / шум без громоздких и дорогих высококлассных детекторов, таких как фотоэлектронный умножитель или усиленное устройство с зарядовой связью, обычно используемое в волоконно-оптических системах спектроскопии. Более того, миниатюрная площадь основания чувствительного элемента (<1,5 мм на 1,5 мм) может стать модульной платформой, адаптированной для многих приложений. Для совместимости с полыми иглами этот подход может быть легко применен к другим органам, таким как печень и легкие ( 26 ), в которых уже применялась волоконно-оптическая спектроскопия.В сочетании с последними достижениями в области гибкой электроники ( 27 ) сенсорный блок OE можно расширить до двухмерного картирования в носимом устройстве ( 28 ) или использовать в качестве имплантируемого датчика ( 29 ). Беспроводная связь может быть легко реализована на преобразованных электрических сигналах с помощью технологии связи ближнего поля ( 30 , 31 ). Чрезвычайно легкий вес оригинального датчика также позволяет избежать значительного искажения спектров отражения и флуоресценции, измеряемых на мягких биологических тканях, из-за воздействия давления ( 32 , 33 ) на оптоволоконные зонды, которые обычно держит в руках оператор.Однако в настоящее время самым большим препятствием для широкого использования подхода OE является то, что более продвинутые методы оптического зондирования, такие как полный спектр DRS или флуоресцентная спектроскопия и зондирование в частотной или временной области, ограничены из-за нехватки адекватных миниатюрных компонентов OE. До сих пор были продемонстрированы только простые методы, основанные на непрерывном мониторинге интенсивности, такие как пульсовая оксиметрия ( 31 ), непрерывная БИК-спектроскопия и четырехцветная спектроскопия ( 30 ).Более того, контроль температуры и герметизация датчика OE более важны, чем для волоконно-оптического зонда, который по своей природе инертен по отношению к биологическим тканям. Постоянные технические инновации в материалах, оптоэлектронике и микротехнологии с вычислительной мощностью позволят разработать различные методы измерения оригинального оборудования для биомедицинских приложений ( 34 ).

Таким образом, мы успешно спроектировали, спроектировали и проверили концепцию миниатюрного оригинального датчика, совместимого с иглой FNA 19 калибра для быстрой, объемной и количественной оценки ткани поджелудочной железы.Прототип устройства продемонстрировал сопоставимые оптические характеристики распознавания с обычной системой DRS и способность отличать рак поджелудочной железы от доброкачественных тканей. Эта безволоконная технология оптического зондирования в сверхминиатюрном форм-факторе имеет широкие возможности настройки с точки зрения геометрии обнаружения источника и, таким образом, может служить платформой для различных методов светового зондирования в биологических тканях.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Оптическое моделирование: Zemax

Встроенная функция MC в непоследовательном режиме Zemax использовалась для моделирования распространения и обнаружения фотонов светодиодами и фототранзистором в тканях поджелудочной железы.Светодиоды (460 и 650 нм) были смоделированы как прямоугольные источники, характеризуемые их угловым распределением излучения и оптической мощностью. Активная область фототранзистора также моделировалась прямоугольным детектором. Для простоты моделирования угловая чувствительность не реализована; таким образом, любые запущенные фотоны, попавшие в зону обнаружения, считывались по их полному весу. Все использованные геометрические размеры (размер чипов и расстояние между источником и детектором) соответствовали физической реализации. Образцы (т.е. ткани поджелудочной железы) моделировались как большой куб (10 см на 10 см на 100 см, ширина по глубина по высоте), чтобы обеспечить полубесконечную среду. Оптические свойства трех тканей поджелудочной железы (нормальной, CP и PDAC) вводились в режим объемного рассеяния Zemax с использованием средней длины свободного пробега и пропускания. Оба параметра были рассчитаны на основе расчетных коэффициентов поглощения (μ _a) и рассеяния (μ _s) с разрешением по длине волны в нашем предыдущем исследовании с использованием модели полуэмпирического анализа в тканях поджелудочной железы человека (см. Параметры, используемые в таблице S2) ( 16 ).Чтобы с помощью вычислений исследовать влияние изменения температуры на характеристики датчика OE, мы использовали μ _a и μ _s при 465 и 655 нм в предположении увеличения на 50 ° C, поскольку длина волны излучения светодиода примерно увеличивается на 0,1 нм / ° С ( 15 ). Хотя известно, что прямое напряжение светодиода уменьшается с повышением температуры ( 35 ), этот эффект не был учтен, потому что наш светодиод работал с драйвером постоянного тока. Температурная зависимость фототранзистора также не рассматривалась в предположении, что логометрический подход нивелирует этот эффект.Для направления рассеяния была выбрана фазовая функция Хеньи-Гринштейна, а анизотропия была зафиксирована на 0,9, чтобы имитировать сильное прямое рассеяние в биологических тканях. Для каждой симуляции было запущено в общей сложности 100 миллионов фотонов, чтобы гарантировать высокое отношение сигнал / шум.

Тепловое моделирование: Ansys

Голова поджелудочной железы человека была смоделирована в виде куба с ребром 3 см. Для сборки сенсора моделировались два светодиода на расстоянии 1,2 мм друг от друга на кремниевой пластине толщиной 150 мкм, прикрепленной к стальному стилету в форме полуцилиндра (рис.2Б). Свойства, связанные с теплопередачей, включая теплоемкость, плотность и теплопроводность головки поджелудочной железы, кремниевой пластины и стального стилета, были входными данными в модель как для стационарного, так и для переходного моделирования (таблица S3). Из-за симметричной структуры модели моделирование проводилось только на половине модели. Для анализа этой модели было использовано около 230 000 узлов. Элементы меньшего размера располагались вокруг светодиодов и кремниевой пластины, поскольку в этих областях существуют значительные колебания температуры.Мощность, обусловленная нагревом, была определена путем приравнивания ее к электрической мощности 10 мВт, которая является мощностью, необходимой для излучения необходимой оптической мощности ~ 1 мВт, оцененной на основе предыдущих оптических расчетов. Исходная температура поджелудочной железы составляла 36,5 ° C.

Изготовление и сборка

Наша микроплатная плата (30 мм на 0,7 мм на 0,15 мм, ширина по длине по толщине) была изготовлена на кремниевой пластине толщиной 500 мкм (слой оксида толщиной 2 мкм сверху для изоляции) следующим образом хорошо зарекомендовавшая себя технология микротехнологии «Мичиганский зонд» ( 36 , 37 ).Каждый этап изготовления и сборки указан в примечаниях S1 и S2 и проиллюстрирован на рис. S2. Вкратце, слои Ti / Pt / Au и Au / In были сформированы путем отрыва для нижних контактных площадок светодиода и фототранзистора и соединений с внешними площадками для соединительной платы печатной платы (рис. 3A). Неупакованные светодиоды и фототранзистор были прикреплены к этой изготовленной μPCB посредством двух последовательных процессов эвтектического соединения для соединения с нижними электродами светодиодов и фототранзисторов (рис.S2, M и N). Затем проводилось соединение проводов, чтобы соединить верхние электроды этих компонентов с контактными площадками на микроплате (рис. S2O). Учитывая размер μPCB (ширину между межсоединениями и контактными площадками) и компоненты на уровне кристалла, все процессы соединения выполнялись с точностью ± 20 мкм. Прозрачная эпоксидная смола, отверждаемая УФ-излучением, для защиты инкапсулирует узел датчика. Каждая контактная площадка на другом конце μPCB была подключена к соединительной плате с помощью дополнительных проводов (рис. 3A). Эти соединенные провода были покрыты такой же эпоксидной смолой, отверждаемой ультрафиолетом, и соединители Omnetics (A79002-001 и A79005-001, Omnetics Connector Corporation, Миннеаполис, Миннесота) использовались для электрического взаимодействия с внешней управляющей электроникой.

Специальная электроника и программа GUI

Специальная управляющая электроника была спроектирована и разработана для управления двумя светодиодами и считывания сигналов обнаружения с фототранзистора через TIA. Микроконтроллер на основе 32-битного ядра ARM (ST32F405OE, STMicroelectronics, Женева, Швейцария) был центральным блоком для управления последовательностью свечения двух светодиодов, установки коэффициентов усиления на усилителе с программируемым коэффициентом усиления (PGA), считывания аналогово-аналогового сигнала. цифровые преобразованные значения напряжения от TIA в сочетании с PGA и отправляют эти данные о напряжении на удаленный портативный компьютер через USB-соединение для обработки и хранения данных.Драйвер тока светодиода с низким уровнем шума был реализован с использованием цифро-аналогового преобразователя (AD5452, Analog Device, Norwood, MA). TIA был разработан для преобразования тока фототранзистора в сигнал напряжения с усилением 10 ⁵ и фильтрацией нижних частот первого порядка с частотой среза 1 кГц. PGA (LTC6910, Linear Technology, Milpitas, CA) позволил дополнительную регулировку усиления с помощью цифрового управления, обеспечивая высокий динамический диапазон. Затем усиленное напряжение фильтровали для получения высокого отношения сигнал / шум.16-битный аналого-цифровой преобразователь (ADS1115, Texas Instruments, Даллас, Техас) считывает результирующие напряжения на частоте 50 кГц. Программа с графическим интерфейсом пользователя была написана на C # для обеспечения операций ввода, отображения и сохранения данных напряжения.

Калибровка и обработка данных

Скорректированная отражательная способность ( R _corr) была получена в процессе калибровки, представленной формулой. 1. Интенсивности отражения ( R _{mes_sample}), измеренные нашим датчиком OE, были вычтены из базовых измерений ( R _{mes_water}) и скорректированы с учетом спектрального отклика системы, характеризуемого измерением калибровочного фантома ( R _{). mes_std}) с известной отражательной способностью ( r _std).Из-за чрезвычайно малого зазора между светодиодом и фототранзистором все компоненты были покрыты вручную эпоксидной смолой (рис. S2P), что приводило к считыванию показаний фототранзистора без измерения образцов посредством прямого падения света светодиода или полного внутреннего отражения на границе раздела между эпоксидной смолой и воздухом. Эти базовые значения по умолчанию были измерены в воде, потому что вода обеспечивала близкий показатель преломления для биологических тканей ( n = 1,33), но без рассеяния. Калибровочный жидкий фантом готовился каждый раз перед нашим измерением с использованием полистирольных микросфер размером 1 мкм (07310-15, Polysciences, Warrington, PA) в деионизированной воде.Его отражательная способность ( r _std) была оценена с использованием нашей волоконно-оптической системы DRS в сочетании со стандартом диффузного отражения Spectralon (SRS-99-020, Labsphere, North Sutton, NH). Измеренная отражательная способность этого жидкостного калибровочного фантома нашим датчиком ( R _{mes_std}) также была вычтена из базовой линии и использована в качестве масштабного коэффициента для определения спектрального отклика системы. Затем коэффициент отражения рассчитывается на основе скорректированного коэффициента отражения на обеих длинах волн с помощью R _{corr_460nm} / R _{corr_650nm} Rcorr = Rmeas_sample − Rmeas_waterRmeas_std − Rmeas_water 9ntd94 набора 900-93 ткани моделирование жидких фантомов производилось титрованием 5 мкМ гемоглобина (H0267, Sigma-Aldrich, St.Louis, MO) на основу, в которой заданная концентрация полистирольных микросфер размером 1 мкм была смешана с деионизированной водой (30 мл) для имитации пониженного коэффициента рассеяния тканей поджелудочной железы человека (~ 10 см ^-1). Изготовленные чувствительные модули (один одиночный блок и один сдвоенный блок) были погружены в фантом, при этом чувствительный блок был расположен в середине стакана. В качестве эталонного показания наша система DRS также измерила каждый фантом с помощью оптоволоконного зонда с расстоянием между источником и детектором 660 мкм.Подробную информацию о получении, калибровке и анализе DRS можно найти в нескольких наших предыдущих исследованиях ( 12 , 16 ). Каждый фантом был измерен трижды с использованием обоих устройств. Отношение сигнал / шум датчиков оригинального оборудования было определено как 20 log ₁₀ (σ ( I ) / μ ( I )) дБ. Здесь μ ( I ) представляет собой среднее значение 20 точек данных за один сбор данных, а σ ( I ) — SD. Репрезентативные отношения сигнал / шум для 460 и 650 нм были усреднены по трем чувствительным элементам, трем повторам и всем фантомам.

Измерения тканей человека Ex vivo

Для пилотной проверки тканей человека мы провели измерения на резецированной поджелудочной железе во время оперативной процедуры (Уиппла или дистальная панкреатэктомия) у четырех пациентов. Исследование было одобрено институциональным наблюдательным советом Медицинской школы Мичиганского университета. Письменное согласие было получено от каждого пациента перед операцией. Резецированная часть поджелудочной железы во время операции была немедленно перенесена в кабинет для бросков. Патологоанатомы очистили ткани от лишней крови и вскрыли интересующие участки для оптического зондирования.Наш прототип двойного датчика без иглы FNA был помещен на поверхность ткани и удерживался руками оператора. Время сбора данных было менее 1 с, и для каждого сайта было сделано три повтора. Сразу после сбора данных OE измеренные участки ткани были извлечены в прямоугольной форме с размером 1 см на 0,5 см для золотого стандарта гистопатологического анализа. Более короткий край вырезанного образца был помечен черными чернилами для обозначения места измерения субъединицы 1. Все измерения были выполнены в течение 1 часа после резекции.Любой участок с измеренным значением R ₄₆₀/ R ₆₅₀ ниже 0,01 и SNR <20 дБ был исключен из анализа из-за чрезмерного количества крови, артефактов движения или ошибок измерения.

Статистический анализ

Разница в оптических данных между различными типами ткани поджелудочной железы в исследовании на людях была проанализирована с использованием критериев суммы рангов Вилкоксона, а статистическая значимость была оценена на уровне 0,05. Все статистические тесты (корреляция Пирсона и тесты суммы рангов Вилкоксона) проводились с использованием статистического пакета R (версия 3.4.1, R Foundation).

ССЫЛКИ И ПРИМЕЧАНИЯ

↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
98
↵ 999 Ю.Г. Чунг, М.-А. Mycek, Оптическая диагностика тканей in situ / миниатюрные оптоэлектронные датчики для диагностики тканей, в Encyclopedia of Modern Optics , B. D. Guenther, D. G. Steel, Eds. (Elsevier, ed.2, 2018), стр.86–94.
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵
↵

Благодарности: Мы благодарим W. Lloyd и F. Wu за обсуждения ранних концептуальных разработок. Мы также благодарим нескольких коллег за техническую поддержку, в том числе К.Кампаси за эвтектическое соединение, Дж. К. Ву за соединение проводов, И. Шин и Г. Чеон за управляющую электронику и программу графического интерфейса пользователя и Дж. Ан за тепловое моделирование. Наконец, мы благодарим Р. Гоффа за клиническую координацию. Финансирование: Это исследование было поддержано Национальным институтом здравоохранения (R21-EB018537), Онкологическим центром Университета Мичигана (UM), Исследовательским фондом UM Rackham Research Fund и UM Lurie Nanofabrication Facility (LNF). Вклад авторов: S.Y.L., J.M.S., E.Y., B.J.M., D.M.S. и M.-ЯВЛЯЮСЬ. разработал исследование. S.Y.L., J.M.P. и K.N. спроектировал и изготовил устройство. S.Y.L. и J.M.P. проведены эксперименты in vitro. D.M.S. облегчил набор пациентов. S.Y.L, J.M.P., J.S. и B.J.M. провели исследование на людях. J.S. и Б.Дж.М. выполнил гистопатологию. S.Y.L., J.M.S. и M.-A.M. проанализировали и интерпретировали данные. S.Y.L., J.M.P., K.N., J.M.S. и M.-A.M. написал газету. Все соавторы участвовали в редактировании статьи. Конкурирующие интересы: S.Y.L., E.Y., J.M.С., М.-А.М. являются изобретателями, находящимися на рассмотрении патента на эту работу, поданного Мичиганским университетом (№ 15/706,900, подана 18 сентября 2017 г., опубликована 11 января 2018 г.). Авторы не заявляют о других конкурирующих интересах. Доступность данных и материалов: Все данные, необходимые для оценки выводов в статье, представлены в документе и / или дополнительных материалах. Дополнительные данные, относящиеся к этой статье, могут быть запрошены у авторов.

Copyright © 2020 Авторы, некоторые права защищены; эксклюзивный лицензиат Американской ассоциации содействия развитию науки.Нет претензий к оригинальным работам правительства США. Распространяется по некоммерческой лицензии Creative Commons Attribution 4.0 (CC BY-NC).

Сколько воды нужно кошкам и профилактика обезвоживания

Пьет ли ваша кошка достаточно воды? Честно говоря, велика вероятность того, что вы на самом деле не знаете, потому что вы редко, если вообще когда-либо, действительно видите, как они идут пить из своей миски.

Как и у многих своеобразных причуд кошек, их привычки к питью (или их отсутствие) восходят к их ранним временам, когда они были охотниками в пустыне.Эти древние кошки получали большую часть, если не всю воду, от своей добычи, такой как мыши и другие грызуны.

Современные кошки сохраняют эти привычки, что создает потенциальный стресс для человека, который хочет убедиться, что его кошка получает достаточно воды. И в наши дни кошки получают гораздо меньше влаги из своего корма, учитывая, что многие из них кормятся сухим кормом, содержащим только 6–10% влаги, что составляет часть влаги, которую они получали бы от крыс и мышей или консервов.

Совместите способность кошки скрывать признаки проблем со здоровьем с их типично привередливыми привычками к питью, и вы довольно быстро обнаружите обезвоженную кошку.

Обезвоживание у кошек может быть вызвано чем угодно: от перегрева (хотя это редкость для кошек, которые умеют находить прохладные места, где они могут лучше регулировать температуру своего тела), отсутствия доступа к чистой питьевой воде или даже другого основного состояния здоровья выпуск, такой как:

Сколько воды должны выпить кошки

Обычно кошкам требуется от 3,5 до 4,5 унций воды на 5 фунтов веса тела в день. Если у вас есть 10-фунтовая кошка, они должны потреблять от 7 до 9 унций воды или примерно половину средней бутылки воды.Ключевое слово здесь — «потреблять», поскольку кошкам не нужно получать воду просто пить.

Банка влажного корма на 70–80% состоит из воды. Поэтому, если ваша кошка ест влажный корм, что настоятельно рекомендуется, она может получить от 3,85 до 4,4 унций воды из одной банки (в среднем 5,5 унций на одну банку). Это половина их дневной воды.

Влажный корм может быть очень полезным по многим причинам, не в последнюю очередь из-за того, что, как вы знаете, кошка, едящая влажный корм, по крайней мере, получает часть необходимой им воды ежедневно.Потому что, если ваша кошка весь день дома, вы можете не увидеть, как она пьет, но есть способы узнать, не получает ли она достаточно воды.

Как контролировать потребление воды вашей кошкой

Невозможно судить о потреблении воды кошкой только по количеству воды, которую вы видите, она пьет. Если ваша кошка придерживается влажного корма, ей, вероятно, и так не придется пить дополнительную воду. А когда они пьют, это может быть так же легко, когда вы находитесь вдали от дома или даже когда вы спите.

Вместо того, чтобы пытаться поймать кошку с поличным, сосредоточьтесь на отслеживании динамики уровня воды в ее миске в конце дня (или в начале следующего). Когда вы чистите и наполняете их миски для воды каждый день (что рекомендуется), обратите внимание на то, сколько осталось. Просто убедитесь, что уровень наполнения чаши один и тот же каждый день, чтобы было легко определить, когда произойдет значительное изменение.

Признаки обезвоживания у кошки

Может быть трудно сказать, действительно ли ваша кошка обезвожена, просто по потреблению воды.Чтобы знать наверняка, проверьте эти признаки.

Свободная кожа: Если вы осторожно «натянете» кусок кожи вашей кошки на плечи, она должна быстро вернуться в нормальное положение после того, как ее отпустят. Если ваша кошка обезвожена, ее кожа будет скользить назад медленнее. «Тест кожной палатки» может быть одним из лучших способов проверить наличие обезвоживания в домашних условиях. Однако он не идеален, поскольку на «время нахождения в шкуре» вашей кошки в значительной степени влияет уровень жира и мышц под кожей в области, где вы проводите тест, а также общее состояние ее кожи.
Липкие десны: Сухие липкие десны могут быть признаком обезвоживания. Если десны кошки влажные, а не «липкие» (липкие), то они, скорее всего, хорошо гидратированы.
Депрессия или вялость: Проверьте, не кажется ли вашей кошке особенно сонной или ленивой. Они с меньшей вероятностью поприветствуют вас, когда вы вернетесь домой? Они менее игривы, чем обычно? Обратите внимание на эти изменения в поведении.
Потеря аппетита: Когда кошка не ест, это часто является немедленным сигналом о том, что что-то не так, даже если это не обезвоживание.Если ваша кошка отказывается от еды более 24 часов, пора обратиться к ветеринару.
Рвота или диарея: Хотя сама по себе рвота или диарея не является признаками обезвоживания, кошка быстро обезвоживается.
Запавшие глаза: Обезвоженный кот может казаться угрюмым или сонным, с запавшими глазами или глазами, которые выглядят несколько «тусклыми».
Повышенная частота пульса: Пройдите курс первой помощи для домашних животных или при следующем посещении ветеринара попросите ветеринара или техника клиники показать вам, как проверить и измерить сердцебиение и / или пульс вашей кошки, чтобы вы знали, выше или ниже, чем обычно.
Одышка: Кошки не часто тяжело дышат, но могут задыхаться при перегреве, что может сопровождаться обезвоживанием.
Меньше мочеиспускания: Вот еще одна причина, по которой вы должны выкапывать кошачьи туалеты ежедневно: чтобы вы могли проверить изменения в мочеиспускании (и дефекации). Также помните, что кошка, которая не писает, может не мочиться, что может быть признаком фатальной непроходимости уретры.

Лечение обезвоживания кошек

Если вы считаете, что ваша кошка обезвожена, посоветуйте ей пить больше воды (см. Советы и рекомендации ниже).Если обезвоживание умеренное, а почки, кишечник и другие органы работают нормально, то дополнительной воды, которую они принимают «перорально», может быть достаточно, чтобы решить проблему. Однако, если обезвоживание более продвинуто, или если у них есть какое-либо заболевание или дисфункция одной или нескольких систем организма, то пришло время посетить ветеринара. Ваш ветеринар может определить, насколько обезвожена ваша кошка, и помочь вам разобраться в этом.

Они также могут дать вашей кошке «жидкости» — сбалансированный раствор электролита.Обезвоживание — это не , а просто о нарушении водного баланса, так как обычно бывает и электролитный дисбаланс. Жидкости можно вводить подкожно (под кожу вашей кошки) или внутривенно (непосредственно в вену кошки), в зависимости от того, насколько обезвожена и больна ваша кошка.

Как заставить кошку пить больше

Если вы беспокоитесь о потреблении воды вашей кошкой, даже если у нее нет признаков обезвоживания, попробуйте один или несколько из следующих приемов.

Найди вкус: Добавьте немного сока тунца или моллюсков или куриного бульона с низким содержанием натрия (прямой бульон, не содержащий лука или чеснока.) к своей воде.
Switch it Up: Переключитесь с сухого корма на влажный. Как упоминалось выше, кошки привыкли получать большую часть воды с пищей. Вы даже можете добавить немного воды в консервы, чтобы они имели консистенцию кашицы (не делайте их слишком жидкими).
Chill Out: Поместите несколько кубиков льда в их миску с водой. Многие кошки очарованы звуком и видом покачивания кубиков льда и с радостью сделают несколько кругов.
- Чтобы воспользоваться этим советом, сделайте кубики льда из сока тунца или моллюсков! Просто добавьте немного сока тунца (вода из банки тунца) или сока моллюсков в воду и поместите смесь в поддон для кубиков льда. Затем используйте эти кубики в миске для воды вашей кошке. (Примечание. Обязательно промаркируйте этот лоток для кубиков льда, чтобы случайно не положить кубики рыбы в коктейли или сок ребенка. Юк!)

Фонтан Катит
Купить на Амазонке | Купить на Chewy

Фонтан PetSafe
Купить на Amazon | Купить на Chewy

Pioneer Pet Лебедь Фонтан для воды
Купить на Амазонке | Купить на Chewy

Больше мисок (а также чашек, стаканов и кружек!): Это особенно актуально, если у вас несколько кошек, поскольку запах другой кошки не позволит им пользоваться одной и той же водой.Но, вообще говоря, неплохо иметь несколько вещей, чтобы ваша кошка могла пить воду: разливаясь по всему дому, чтобы подхватить кошачью страсть к путешествиям.
Scrub a Dub: Ежедневно очищайте миску для воды кошки, чтобы удалить неприятные запахи и потенциально вредные бактерии. У них должна быть свежая вода в мисках и стаканах ежедневно.
Смените источник: Если ваша кошка не роет воду из-под крана — эй, они в конце концов привередливы — попробуйте отфильтровать ее (фильтр Brita или специальный фильтр со стороны чаши для домашних животных) или переключитесь на воду в бутылках.